rus eng
Архив номеров / Номер 6, 2021 год Распечатать

Управление риском по лептоспирозу при импорте «in vivo»-эмбрионов крупного рогатого скота в Российскую Федерацию

УДК 619:616.98:579.834.115:636.2:005.52:005.33:339.562
DOI 10.33861/2071-8020-2021-6-9-12

Оганесян А.С., Баскакова Н.Е., Мищенко В.А., Мищенко А.В. Федеральное государственное бюджетное учреждение
«Федеральный центр охраны здоровья животных», г. Владимир
Черных О.Ю., Кривонос Р.А. Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования
«Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина», г. Краснодар

В настоящее время в Российской Федерации животноводст­во и производство говядины и молока является одним из перспективных экспортных направлений, требующих для эффективного наращивания объема продукции использования со­временных биотехнологий в воспроизводстве стад крупного рогатого скота. Перенос эмбрионов, полученных «in vivo» и «in vitro», использу­ется во всем мире для улучшения и сохранения генетически ценных животных, а также для ускоренного наращивания поголовья [11].

Ветеринарными органами стран для защиты своих поголовий скота контролируются основные, с эпизоотологической точки зрения, риски, сопряженные с использованием эмбрионов и торговлей таки­ми товарами с другими странами мира. Международное общество по переносу эмбрионов (IETS) разработало руководство по процедурам переноса эмбрионов, и классифицировало патогены, способные пе­редаваться с эмбрионами «in vivo» в зависимости от риска, что вошло в соответствующие главы Кодекса МЭБ. Одним из таких патогенов яв­ляется возбудитель лептоспироза [4, 19].

Лептоспироз - это зоонозная инфекция способная поражать че­ловека при контакте с животными. Ущерб, причиняемый крупному рогатому скоту в острой и хронической фазах, при лептоспирозах характеризуется абортами, задержкой плаценты, снижением выра­ботки молока, маститом, бесплодием и постоянной инфекцией по­чек. Инфекции у крупного рогатого скота известны как случайные, когда речь идет о таких патогенных Leptospira spp. как серогруппы Icterohaemorrhagiae, Hebdomadis, Grippotyphosa и Canicola. Эти ин­фекции передаются через непрямой или, реже, прямой контакт с ин­фицированным хозяином, обычно резервуаром дикой природы (гры­зуны для серогруппы Icterohaemorrhagiae). С другой стороны, крупный рогатый скот может выступать в качестве основного резервуара бак­терий для L. borgepetersenii серовар Hardjobovis и L. interrogans серо- вар Hardjoprajitno [9, 15].

Таким образом актуальной представляется цель нашего иссле­дования - рассмотрение вопроса о мерах по управлению риском в отношении лептоспироза крупного рогатого скота при ввозе на терри­торию Российской Федерации «in vivo’’-эмбрионов крупного рогатого скота.

Материалы и методы исследований. Анализировали меры по уп­равлению риском Российской Федерации - ветеринарно-санитарные требования при ввозе эмбрионов КРС «in vivo», отраженные в согласо­ванных формах ветеринарных сертификатов (на примере №НА-1334 в формате «Канада-РФ» [1]), ветеринарно-санитарные требования ЕАЭС и РФ при ввозе эмбрионов (Решение Комиссии Таможенного союза от 18 июня 2010 г. № 317) [2], рекомендации «Всемирной ор­ганизации здравоохранения животных» (МЭБ), изложенные в главе 4.8. Кодекса Здоровья наземных животных МЭБ [19], данные науч­ных публикаций и обзоров представленные на сайте «National Center for Biotechnology Information». При этом использовали электронный поиск литературы, чтобы охватить публикации с 1964 до 2020 годы по проблематике лептоспироза у крупного рогатого скота и серова- ра Hardjo. Анализ публикаций включал отбор, рассмотрение резуль­татов и оценку методологического качества отдельных оригинальных исследований и обобщающих обзорных работ. Синтез информации заключался как в обобщающей оценке в отношении поставленного вопроса нескольких сходных исследований, так и в указании пробе­лов, выявленных в работах по рассматриваемому вопросу.

Анализ документов провели традиционным методом с элементами контент-анализа в виде совокупности логических построений, направ­ленных на раскрытие основного содержания. Результаты анализа вы­разили в виде обсуждения сравнительной схемы по предложенным мерам и рекомендаций.

Результаты исследований и их обсуждение. Leptospira borgpetersenii серовар Hardjobovis, согласно ст. 4.8.14 Кодекса МЭБ, относится к болезням или патогенным агентам категории 4 (согласно International Embryo Technology Society (IETS)), то есть к тем, в отно­шении которых научные исследования проводились или ведутся, и указывают на то, что пока невозможно сделать какие-либо выводы относительно уровня риска их передачи с эмбрионами «in vivo», или риск передачи через пересадку эмбрионов не может быть «незначи­тельным», даже в том случае, если с эмбрионами обращаются долж­ным образом в соответствии с Руководством IETS [19].

Согласно 4.8.5. Кодекса МЭБ, конечный уровень риска определя­ют три фазы снижения риска распространения болезней в процессе переноса эмбрионов, полученных «in vivo». Далее рассмотрим эти фазы по отношению к возбудителям лептоспироза у крупного рогатого скота.

Первая фаза снижения риска при переносе эмбрионов учитывает эпизоотическую ситуацию в стране, зоне и стадах-доноров по пато­генным агентам, не включенным в категорию 1 IETS (ст. 4.8.14 [19]) и сами характеристики патогенов. Leptospira borgpetersenii серовар Hardjobovis является распространенной причиной лептоспироза круп­ного рогатого скота. Это один из наиболее важных сероваров, потому что крупный рогатый скот являясь основным хозяином может быть постоянным источником инфекции. Зачастую, пораженный скот не проявляет клинических признаков. Животные-носители, поддержи­вают инфекцию месяцы, годы или даже в течение всей жизни и эф­фективно передают лептоспиры другим животным (крупный и мелкий рогатый скот) и человеку. Крупный рогатый скот выделяет лептоспиры с мочой, репродуктивными жидкостями и выделениями из матки, тем самым загрязняя пастбища, питьевую воду и корм. Зараженная моча является основным источником заражения и передачи возбудителя. Зараженные абортирующие коровы также могут распространять леп­тоспиры истечениями из половых путей. Зараженные быки способны распространять инфекцию со спермой и заражать коров [10, 15].

С учетом того, что в отличие от быков-доноров, коровы-доноры не являются резидентами станций искусственного осеменения (то есть сроки карантинирования и создание однородной популяции доноров- эмбрионов специальными мерами тестирования/обработок/наблю- дения по стадийному допуску к отбору для них не описано в рекомен­дациях МЭБ в отличие от быков-доноров спермы) и их эпизоотический статус по патогенам, сопряженным с торговлей эмбрионами тесно связан со статусом стада [19] - первая фаза снижения риска для них наиболее значима.

В соответствии с требованиями РФ/ЕАЭС стада доноров должны быть свободны от лептоспироза в течение последних 3 месяцев* (Со­гласованная форма ветеринарного сертификата № НА-1334 в форма­те «Канада-РФ» требует 12 месяцев) [1, 2].

Механизм доказательства свободы стад крупного рогатого скота от лептоспироза может быть реализован за счет кампаний вакцинации и мониторинга эпизоотического статуса стада с применением мето­дов лабораторной диагностики методами, рекомендованными МЭБ, которые для крупного рогатого скота имеют ряд ограничений [15]. До­статочно ли трех месяцев для доказательства свободы стад от лептос­пироза крупного рогатого скота L. borgepetersenii серовар Hardjobovis и L. interrogans серовар Hardjoprajitno, по сравнению с другими леп­тоспирами, в отношении которых крупный рогатый скот не является носителем, - вопрос, на наш взгляд, дискуссионный.

Вторая фаза снижения риска при переносе эмбрионов использует международно-признанные процедуры обработки эмбрионов, кото­рые изложены в Руководстве IETS. Согласно ст. 4.8.6. Кодекса МЭБ, антибиотики следует добавлять в среды, используемые для сбора, об­работки, отмывки и хранения эмбрионов, как это рекомендовано в Руководстве IETS.

Согласно исследованиям, проведенным в Бразилии, была оценена эффективность методов обработки, рекомендованных (IETS) при пе­ресадке эмбрионов для ооцитов крупного рогатого скота, созревших in vitro и подвергнутых экспериментальному воздействию Leptospira interrogans серовара Grippotyphosa. Результаты свидетельствовали, что подтверждена лишь частичная эффективность обработок, реко­мендованных IETS в отношении патогена, что вероятно, зависит не только от вида возбудителя, но и вирулентности [11]. Несмотря на то, что для эмбрионов «in vivo» риски представляются ниже относительно эмбрионов «in vitro» [19], эффективность данного этапа по снижению риска в отношении Leptospira spp., на наш взгляд, нужно принимать с осторожностью, так как использованные в опытах добавки пеницил­лина 10000 МЕ/мл и стрептомицина 10 мг/мл по IETS не показали желаемой высокой эффективности к Leptospira spp. [11].

Исследования А. Bielanski и O. Surujballi на эмбрионах «in vivo» и «in vitro» показали, что жизнеспособные лептоспиры были только в эмбрионах, культивированных в среде без антибиотиков [5], однако добавление пенициллина и стрептомицина в среду с зараженными Leptospira borgpetersenii serovar Hardjobovis ооцитами и эмбриона­ми, полученными in vivo и in vitro, устраняет инфекцию и гарантирует, что эмбрионы не будут переносить патоген [5].

На наш взгляд, имеющиеся обоснованные экспериментальные данные о том, что, несмотря на присутствие Leptospira borgpetersenii серовар Hardjobovis в репродуктивном тракте животных-доноров и ассоциации ДНК возбудителя с эмбрионами в матке, передача это­го заболевания вряд ли будет происходить при переносе эмбрионов, продуцируемых «in vivo» при надлежащей обработке [6], с другой сто­роны, в отношении Leptospira interrogans таких данных не получено, и данные не являются полевым исследованием, что, на наш взгляд, подтверждает некую неопределенность в отношении риска Leptospira borgpetersenii серовар Hardjobovis для эмбрионов «in vivo» и включе­нию его в категорию 4 IETS.

Единые ветеринарные требования ЕАЭС при ввозе эмбрионов подчеркивают, чтобы импортируемые эмбрионы были отобраны, хранились и транспортировались в соответствии с рекомендациями Кодекса здоровья наземных животных МЭБ [2], а, следовательно, принимают рекомендованные IETS процедуры. В рамках согласован­ных Российской Федерацией форм ветеринарных сертификатов это всегда отражено в заключительных разделах [1].

В итоге, риск того, что лептоспироз сможет передаваться эмбри­онами «in vivo», которые собирают у животных-доноров (в том чис­ле инфицированных лептоспирами), когда для сбора и обработки эмбрионов используют рекомендованные IETS процедуры отмывки и используют среды с антибиотиками, эффективными против лептоспир, - представляется низким (но не устраняется полностью).

Третья фаза управления риском при переносе эмбрионов в отно­шении болезней, не включенных в категорию 1 IETS (Ст. 4.8.14 Кодек­са МЭБ [19]), включает в себя снижение риска посредством:

  • наблюдения за донорами и стадами доноров после сбора с уче­том инкубационных периодов заболеваний, представляющих интерес для определения ретроспективно состояния здоровья доноров;
  • лабораторного тестирования жидкостей для сбора (отмывки) эм­брионов и нежизнеспособных эмбрионов или же других образцов, та­ких как кровь доноров на наличие инфицирования представляющих интерес патогенных агентов.

Как отмечено, доноры в качестве дополнительной меры могут быть протестированы на лептоспироз с отрицательным результатом, согласно требованиям РФ/ЕАЭС, хотя и не оговорено на каком этапе будет проведено тестирование [2]. При этом тестирование с исполь­зованием метода индикации возбудителя или генома - менее пред­почтительно, на наш взгляд, за счет несовершенства прямых методов детекции в отношении животных-носителей, которые в ряде случаев требуют 3-кратного отбора проб в том числе с применением провока­ции [12, 15, 20]. Изоляция лептоспир, и в частности серовара Hardjo может потребовать инкубации культур в течение 26 недель и зависит от количества организмов, присутствующих в образце [15]. Исполь­зование же серологических методов в вакцинированных поголовьях доноров представляется несколько ограниченным [8]. Тестирование доноров основным рекомендованным МЭБ методом (МАТ - тест мик­роагглютинации) в диагностическом титре 1:100 у поголовья крупного рогатого скота, являющегося носителями, не всегда позволяет уста­новить инфицирование, а в случае вакцинации, или перенесенной инфекции (при лечении) - не представляет диагностической ценности на индивидуальном уровне. В частности, при применении МАТ у круп­ного рогатого скота (носителей серовара Hardjo) при диагностическом титре 1:100 - чувствительность теста составит всего 41%, и даже когда минимально значимый порог титра снизить до 1/10, чувствительность теста составит только 67% [15].

Как МАТ, так и изоляция лептоспир являются тестами, рекомен­дованными МЭБ для тестирования на индивидуальном уровне на лептоспироз животных, при этом имеющие свои существенные ог­раничения у крупного рогатого скота в отношении серовара Hardjo. Таким образом, у крупного рогатого скота на индивидуальном уровне тестирование рекомендованными МЭБ методами (МАТ и изоляция в культуре) не достигает высокой чувствительности и специфичности. Комбинация методов прямой и непрямой диагностики, хотя и может повысить прогностическую точность выбраковки животных, для прак­тических целей (скрининга) представляется затратной с материальной и практической сторон.

Далее следует рассмотреть управление риском за счет мер, не ох­ватываемых рекомендациями МЭБ (или охватываемых косвенно):

1. Обработка доноров антибиотиками, которые показывают эф­фективность в отношении носителей лептоспир или вакцинами, на наш взгляд, является также достаточно значимым вопросом для рас­смотрения в качестве отдельных мер. Дело в том, что данные меры давно используются как альтернативные тестированию при ввозе жи­вого скота в РФ/ЕАЭС и спермы крупного рогатого скота, несмотря на их ограниченность [2, 8].

Так, исследования изолятов лептоспир, проведенные за 80-летний период выделения от продуктивных животных различного географи­ческого происхождения в период с 1936 по 2016 годы, указывают на риск отказа некоторых антибиотиков при заражении высокими дозами как у животных, так и у людей [14]. В целом же различные представители Leptospira spp. показывают достаточно разнообраз­ную чувствительность к антибиотикам в сериях опытов по определе­нию чувствительности к антимикробным препаратам, проведенных in vitro [13], и признается их неоднородная чувствительность к противо- микробным препаратам in vivo, однако корреляция восприимчивости возбудителя in vitro к исходу в испытаниях по лечению лептоспироза отсутствует [16]. Рандомизированное контролируемое испытание, проведенное с целью оценки эффективности использования антибио­тиков для лечения лептоспироза крупного рогатого скота, вызванно­го Leptospira borgpetersenii серовар Hardjo, показало, что успешное разрешение лептоспироза у крупного рогатого скота путем введения дигидрострептомицина-пенициллина G подтверждало результаты, полученные другими исследователями и показывало, что три других антибиотика (окситетрациклин, тилмикозин и цефтиофур) также были эффективны в отношении лептоспироза и могут быть использованы как заменители дигидрострептомицина, антибиотика, который боль­ше не доступен для использования на продуктивных животных в Со­единенных Штатах. Меж тем стоимость, безопасность и время отмены различных вариантов лечения должны учитываться [3]. Исследование Cortese V.S. с соавт., продемонстрировало способность тулатромици- на и цефтиофура в виде кристаллической свободной кислотной сус­пензии) избавлять от Leptospira borgpetersenii серовар Hardjo типа Hardjobovis (L. hardjobovis) экспериментально зараженный крупный рогатый скот. Обработка тулатромицином привела к очищению у всех животных (9 из 9) от L. hardjobovis в моче и почечной ткани, а об­работка цефтиофуром в форме кристаллической свободной кислоты привела к очищению у 8 из 10 телок от организмов в моче и у всех 10 животных в почечной ткани [7].

Всё это свидетельствует, что обработка животных-доноров антибио­тиками эффективными в отношении носителей лептоспир, позволя­ющая снизить вероятное выделение возбудителя у носителей могут быть приняты как удовлетворительные меры для доноров, но с отдель­ными ограничениями. Главное из которых - это то, что применение антибиотика у доноров должно показать эффективность в отношении лептоспир, а доказательство его эффективности следует рассматри­вать только при условии использования производителем и ветеринар­ной медициной подходов, принятых в доказательной медицине.

В проведенном мета-анализе J.M. Sanhueza c соавторами за­ключают, что один курс вакцинации против Leptospira borgpetersenii серовар Hardjobovis у крупного рогатого скота до заражения снижает риск выделения возбудителя с мочой, при детекции с использовани­ем бактериологических посевов, с вероятностью в интервале 80,6­94,9%. Хотя показанная эффективность вакцин, как правило, была выше в исследованиях, где использовались моновалентные вакцины, чем в случае с вакцинами, включающими 2 и более серовара воз­будителя, чтобы подтвердить значимость такого наблюдения необхо­димы дополнительные доказательства [18]. Полученные Rinehar C.L. с соавторами результаты свидетельствуют о том, что пятивалентная вакцина против лептоспир, содержащая L. interrogans серовар Hardjo типа Hardjoprajitno, может обеспечить защиту от заражения штаммом L. borgpetersenii серовар Hardjo типа Hardjobovis 203. Вакциниро­ванные животные не выделяли лептоспир с мочой и не показывали инфицирование почек при вскрытии и микроскопии. При этом важно учесть перекрестную защиту от тех штаммов, которые распростра­нены в полевых условиях [17]. Возможность защиты телят в раннем возрасте от заражения и колонизации лептоспирами тканей почек и репродуктивной системы и значительное сокращение выделения с мочой после заражения вплоть до 12 месяцев после вакцинации было показано Zimmerman A.D. с соавторами [21], однако результаты больше применимы к стадному, а не индивидуальному уровню.

К главным ограничениям вакцинации-доноров следует отнести необходимость перекрестной защиты от тех штаммов, которые рас­пространены в полевых условиях до момента встречи с возбудителем [15], их негативное влияние на серологическую диагностику вакцини­рованных, а также недостаток точных данных о эффективности «сроч­ной» вакцинации до отбора эмбрионов на индивидуальном уровне, так как общеизвестно, что вакцины против лептоспироза лечебным действием не обладают [15]. Вакцинопрофилактика строится на со­здании у животных иммунитета с раннего возраста, и эффективна в качестве профилактической меры на стадном уровне - до момента заражения/экспозиции. В целом же вакцинопрофилактика на стад­ном уровне может явиться действенным инструментом снижения риска присутствия в стадах носителей в случае внедрения программы вакцинации и тестирования с учетом оборота стада и потока живот­ных по половозрастным группам. Доноры, происходящие из вакцини­рованных стад, не представляют риска носительства лишь в случае, когда с рождения у животного на индивидуальном уровне обеспечена перекрестная защита от штаммов, которые распространены в поле­вых условиях. Эффективность отдельных вакцин для крупного рогатого скота на индивидуальном уровне в отношении предотвращения ин­фицирования и выделения патогена во внешнюю среду лептоспир является наиболее важным при разработке программ профилактики лептоспироза в стадах на эндемичных территориях и для обеспечения защиты животных и человека в полевых условиях.

Таблица 1. Оценка дополнительных мер в отношении снижения риска распространения лептоспироза крупного рогатого скота при экспорте эмбрионов in vivo

Мера/ угроза

Благополучие стад-доноров/ Вероятность носительства

1 фаза снижения риска

Действующая мера РФ (ЕАЭС)

Требуется благополучие стад в течение 3 месяцев и тестирование животного на лептоспироз (прим.: не указаны сроки тестирования)

Дополнительная мера

Тестирование в стаде животного на лептоспироз

Срочная вакцинация доноров

Ограничение (пробелы)

Ограниченность серологических методов у крупного рогатого скота (вакцинированных стад и у носителей) и относительно низкая чувствительность прямых методов у носителей (требуется серийный отбор проб и провокация). Значительное время, затрачиваемое на изоляцию возбудителя.

Вакцины не обладают лечебным эффектом. Требуется программа вакцинации на уровне стада (создание популяционного иммунитета) и обеспечении перекрестной защиты от штаммов, которые распространены в полевых условиях.

Заключение

Сомнительно. Имеются существенные ограничения рекомендованных МЭБ методов тестирования для крупного рогатого скота на индивидуальном уровне (МАТ и изоляция в культуре). Тестирование крупного рогатого скота более приемлемо на стадном уровне (например, при формировании партии животных на экспорт или мониторинга стад).

Не приемлемо на индивидуальном уровне. Вакцины не обладают лечебным эффектом. Иммунизация обеспечивает защиту в полевых условиях при иммунизации до момента инфицирования.

2 фаза снижения риска

Действующая мера РФ/ЕАЭС

Требуется чтобы эмбрионы были отобраны, хранились и транспортировались в соответствии с рекомендациями Кодекса здоровья наземных животных МЭБ

Доп. мера

Использование рекомендаций IETS по отмывке к 4 категории риска

Обработка антибиотиками доноров

Ограничение (пробелы)

Имеются лишь отдельные экспериментальные данные по переносу эмбрионов при надлежащей обработке и эффективности препарата в среде в отношении лептоспир

Влияет на вероятность контаминации исходного материала при доказанной эффективности препарата

Заключение

Данные ограничены отдельными исследованиями. Не может рекомендоваться в качестве основной меры

Косвенное влияние. Не может рекомендоваться в качестве основной меры

3 фаза снижения риска

Действующая мера РФ/ЕАЭС

Тестирование животного на лептоспироз

Доп. мера

Тестирование доноров непосредственно перед отбором

Обработка антибиотиками доноров

Ограничение (пробелы)

Ограниченность серологических методов у крупного рогатого скота (в вакцинированных стадах и у носителей) и относительно низкая чувствительность прямых методов у носителей (серийный отбор проб с провокацией. Время на изоляцию возбудителя).

Требуется доказанная эффективность препарата.

Заключение

Сомнительно. Имеются существенные ограничения рекомендованных МЭБ методов тестирования для крупного на индивидуальном уровне. Тестирование крупного рогатого скота более приемлемо на стадном уровне (например, при формировании группы доноров на станциях искусственного осеменения).

Приемлемо при доказанной эффективности препарата.

В таблице 1, мы обобщили предполагаемые дополнительные меры в отношении лептоспироза крупного рогатого скота при экспорте эмб­рионов in vivo с указанием их пробелов по отношению к трём фазам снижения риска, рекомендованным МЭБ [19].

Заключение. Тестирование доноров на лептоспироз в качестве меры методами, рекомендованными МЭБ (МАТ и изоляция) сильно ограничено по чувствительности, специфичности, сложности пробоот- бора и временным затратам. Достаточность международно-признан­ных процедур (IETS) обработки эмбрионов (отмывка и использование сред с антибиотиками) ограничено отдельными исследованиями в отношении отдельных лептоспир. Хотя в ряде работ результаты и об­надеживают, это не может рекомендоваться в качестве единственной достаточной меры и требует дальнейшего изучения с разработкой режимов обработки эмбрионов для избавления от патогена, что на наш взгляд представляется наиболее перспективным. Лечебным эф­фектом вакцинация крупного рогатого скота против лептоспироза не обладает, поэтому рекомендации по вакцинации доноров «до отбора эмбрионов» нельзя оценивать, как приемлемые. Таким образом, для доноров «in vivo» эмбрионов в качестве дополнительной меры из всех 11 рассмотренных выше, можно рекомендовать обработку антибиоти­ком животных-доноров по схемам с доказанной эффективностью пре­парата в отношении лептоспир (дозировка/кратность/время полной элиминации возбудителей из организма донора).

Список литературы:

  1. Официальный сайт Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору. - https://fsvps.gov.ru/fsvps/importExport.
  2. Решение Комиссии Таможенного союза. 2010. № 317.
  3. Alt D.P., Zuerner R.L., Bolin C.A. Evaluation of antibiotics for treatment of cattle infected with Leptospira borgpetersenii serovar hardjo// J. Am. Vet. Med. Assoc. 2001. Vol. 219. pp. 636-639.
  4. Bielanski A. Disinfection procedures for controlling microorganisms in the semen and embryos of humans and farm animals// Theriogenology. 2007. Vol. 68. Iss. 1. Pp. 1-22.
  5. Bielanski A., Surujballi O. Association of Leptospira borgpetersenii serovar Hardjo type Hardjobovis with bovine ova embryos produced by in vitro fertilization// Theriogenology. 1996. 46. pp. 45-55.
  6. Bielanski A., Surujballi O., Golsteyn Thomas E., Tanaka E. Sanitary status of oocytes and embryos collected from heifers experimentally exposed to Leptospira borgpetersenii serovar hardjobovis// Animal Reproduction Science. 1998. Vol. 54. Iss. 2. pp. 65-73.
  7. Cortese V.S. et al. Evaluation of two antimicrobial therapies in the treatment of Leptospira borgpetersenii serovar hardjo infection in experimentally infected cattle// Vet. Ther. 2007. Vol. 8 (3). pp. 201-208.
  8. Eaglesome M.D., Garcia M.M. Disease risks to animal health from artificial insemination with bovine semen// Rev. Sci. Tech. 1997. Vol. 16 (1): 215-225.
  9. Fabien Gregoire et al. Laboratory Diagnosis of Bovine Abortions Caused by Non-Maintenance Pathogenic Leptospira spp.: Necropsy, Serology and Molecular Study Out of a Belgian Experience// Pathogens. 2020. Vol. 9 (6): 413.
  10. Givens M. Review: Risks of disease transmission through semen in cattle// Animal. 2018. Vol. 12 (S1). pp. 165-171.
  11. Goes A.C., Piccolomini M.M., Castro V., D'Angelo M. Eficacia dos tratamentos estabelecidos pelo Manual da IETS, em oocitos, expostos a Leptospira interrogans// Arq. Bras. Med. Vet. Zootec. 2012. Vol. 64 (1). pp. 108-113.
  12. Jarlath E. Nally. Comparison of Real-Time PCR, Bacteriologic Culture and Fluorescent Antibody Test for the Detection of Leptospira borgpetersenii in Urine of Naturally Infected Cattle// Vet. Sci. 2020. Vol. 7 (2).
  13. Kim Doo, Kordick Dorsey, Divers Thomas, Chang Yung-Fu. In vitro susceptibilities of Leptospira spp. and Borrelia burgdorferi isolates to amoxicillin, tilmicosin and enrofloxacin// J. Vet. Sci. 2006. Vol. 7 (4). pp. 355-359.
  14. Liegeon Geoffroy, Delory Tristan, Picardeau Mathieu. Antibiotic susceptibilities of livestock isolates of leptospira// Int. J. of Antimicrobial Agents. 2018. Vol. 51. Iss. pp. 693-699.
  15. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. OIE. 2019. - https://www.oie.int/standard-setting/terrestrial-manual/access-online/
  16. Murray C.K., Hospenthal D.R. Determination of Susceptibilities of 26 Leptospira spp. Serovars to 24 Antimicrobial Agents by a Broth Microdilution Technique// Antimicrob. Agents Chemother. 2004. Vol. 48 (10). p. 4002-4005.
  17. Rinehart C.L., Zimmerman A.D., Buterbaugh R.E., Jolie R.A., Chase C.C.L. Efficacy of vaccination of cattle with the Leptospira interrogans serovar Hardjo type Hardjoprajitno component of a pentavalent Leptospira bacterin against experimental challenge with Leptospira borgpetersenii serovar Hardjo type Hardjobovis// Am. J. Vet. Res. 2012. Vol. 73 (5). pp. 735-740.
  18. Sanhueza J.M., Wilson P.R., Benschop J., Collins-Emerson J.M., Heuer C. Meta-analysis of the efficacy of Leptospira serovar Hardjo vaccines to prevent urinary shedding in cattle// Prev. Vet. Med. 2018. Vol. 153. pp. 71-76.
  19. Terrestrial Animal Health Code. OIE. 2019. - https://www.oie.int/standard- setting/terrestrial-code/access-online/
  20. Wagenaar J., Zuerner R.L., Alt D., Bolin C.A. Comparison of polymerase chain reaction assays with bacteriologic culture, immunofluorescence, and nucleic acid hybridization for detection of Leptospira borgpetersenii serovar Hardjo in urine of cattle// Am J Vet Res. 2000. Vol. 61 (3). pp. 316-620.
  21. Zimmerman A.D. et al. Immunity in heifers 12 months after vaccination with a multivalent vaccine containing a United States Leptospira borgpetersenii serovar Hardjo isolate// J. Am. Vet. Med. Assoc. 2013. Vol. 242 (11). pp. 1573-1577.

Резюме. В работе представлен анализ ветеринарно-санитарных мер по леп­тоспирозу, при импорте в Российскую Федерацию эмбрионов крупного рогатого скота, обсуждены рекомендации по снижению риска, сопряженного с лептоспи­розом при торговле эмбрионами крупного рогатого скота, представленные в Ко­дексе здоровья наземных животных МЭБ, так и не оговоренные МЭБ. Проведена оценка риска, учитывающая три фазы управления при пересадке эмбрионов, определяющая конечный уровень риска распространения болезней в процессе переноса эмбрионов, полученных «in vivo». Критически оценена приемлемость и обоснованность дополнительных мер по лептоспирозу крупного рогатого скота при экспорте эмбрионов «in vivo», таких как вакцинация коров-доноров, обработ­ка коров-доноров против лептоспироза антибиотиками, тестирование коров-до­норов при допуске к отбору эмбрионов и проведение манипуляций с эмбрионами с использованием процедур, рекомендованных Международным обществом по переносу эмбрионов. Акцентировано внимание на особенностях протекания леп­тоспироза у крупного рогатого скота в отличие от других восприимчивых видов, выражающихся в высокой вероятности носительства Leptospira borgepetersenii серовар Hardjobovis и Leptospira interrogans серовар Hardjoprajitno, несовер­шенстве методов лабораторной диагностики на индивидуальном уровне и не­обходимости дальнейших изучений режимов манипуляций с эмбрионами с использованием процедур отмывки в средах с антибиотиками, как наиболее перспективных. Вакцинация против лептоспироза крупного рогатого скота оце­нена авторами как надежный инструмент по управлению на уровне стад, но не на индивидуальном уровне животных-доноров. По результатам анализа и оценки, в качестве дополнительной меры, в настоящих условиях изученности проблемы, по отношению к коровам-донорам, обоснована и рекомендована обработка их антибиотиком с доказанной эффективностью препарата в отношении возбудите­ля лептоспироза.

Ключевые слова: крупный рогатый скот, лептоспироз, "in vivo"-эмбрионы крупного рогатого скота, коровы-доноры, ветеринарно-санитарные меры, им­порт, международная торговля, анализ риска, управление рисками, кодекс здо­ровья наземных животных.

Сведения об авторах:

Оганесян Андрей Серожович, кандидат ветеринарных наук, заведующий сектором анализа риска информационно-аналитического центра Управле­ния ветнадзора ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: oganesyan@arriah.ru.

Баскакова Наталья Евгеньевна, юрисконсульт сектора анализа рис­ка информационно-аналитического центра Управления ветнадзора ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: baskakova@arriah.ru.

Мищенко Владимир Александрович, доктор ветеринарных наук, профес­сор, главный научный сотрудник лаборатории профилактики болезней свиней и рогатого скота ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: mishenko@arriah.ru.

Черных Олег Юрьевич, доктор ветеринарных наук, доцент, профессор кафед­ры микробиологии, эпизоотологии и вирусологии ФГБОУ ВО «Кубанский государст­венный аграрный университет имени И. Т. Трубилина»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-918-4956659; e-mail: gukkvl50@kubanvet.ru.

Кривонос Роман Анатольевич, кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры паразитологии, ветсанэкспертизы и зоогигиены ФГБОУ ВО «Кубанский государст­венный аграрный университет имени И. Т. Трубилина»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; e-mail: uv@krasnodar.ru.

Ответственный за переписку с редакцией: Мищенко Алексей Вла­димирович, кандидат ветеринарных наук, старший научный сотрудник информационно-аналитического центра Управления ветнадзора ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: mischenko@arriah.ru.

 

2011 © Ветеринария Кубани Разработка сайта - Интернет-Имидж