УДК 619:616.98:579.834.115:636.2:005.52:005.33:339.562
DOI 10.33861/2071-8020-2021-6-9-12
Оганесян А.С., Баскакова Н.Е., Мищенко В.А., Мищенко А.В. Федеральное государственное бюджетное учреждение
«Федеральный центр охраны здоровья животных», г. Владимир
Черных О.Ю., Кривонос Р.А. Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования
«Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина», г. Краснодар
В настоящее время в Российской Федерации животноводство и производство говядины и молока является одним из перспективных экспортных направлений, требующих для эффективного наращивания объема продукции использования современных биотехнологий в воспроизводстве стад крупного рогатого скота. Перенос эмбрионов, полученных «in vivo» и «in vitro», используется во всем мире для улучшения и сохранения генетически ценных животных, а также для ускоренного наращивания поголовья [11].
Ветеринарными органами стран для защиты своих поголовий скота контролируются основные, с эпизоотологической точки зрения, риски, сопряженные с использованием эмбрионов и торговлей такими товарами с другими странами мира. Международное общество по переносу эмбрионов (IETS) разработало руководство по процедурам переноса эмбрионов, и классифицировало патогены, способные передаваться с эмбрионами «in vivo» в зависимости от риска, что вошло в соответствующие главы Кодекса МЭБ. Одним из таких патогенов является возбудитель лептоспироза [4, 19].
Лептоспироз - это зоонозная инфекция способная поражать человека при контакте с животными. Ущерб, причиняемый крупному рогатому скоту в острой и хронической фазах, при лептоспирозах характеризуется абортами, задержкой плаценты, снижением выработки молока, маститом, бесплодием и постоянной инфекцией почек. Инфекции у крупного рогатого скота известны как случайные, когда речь идет о таких патогенных Leptospira spp. как серогруппы Icterohaemorrhagiae, Hebdomadis, Grippotyphosa и Canicola. Эти инфекции передаются через непрямой или, реже, прямой контакт с инфицированным хозяином, обычно резервуаром дикой природы (грызуны для серогруппы Icterohaemorrhagiae). С другой стороны, крупный рогатый скот может выступать в качестве основного резервуара бактерий для L. borgepetersenii серовар Hardjobovis и L. interrogans серо- вар Hardjoprajitno [9, 15].
Таким образом актуальной представляется цель нашего исследования - рассмотрение вопроса о мерах по управлению риском в отношении лептоспироза крупного рогатого скота при ввозе на территорию Российской Федерации «in vivo’’-эмбрионов крупного рогатого скота.
Материалы и методы исследований. Анализировали меры по управлению риском Российской Федерации - ветеринарно-санитарные требования при ввозе эмбрионов КРС «in vivo», отраженные в согласованных формах ветеринарных сертификатов (на примере №НА-1334 в формате «Канада-РФ» [1]), ветеринарно-санитарные требования ЕАЭС и РФ при ввозе эмбрионов (Решение Комиссии Таможенного союза от 18 июня 2010 г. № 317) [2], рекомендации «Всемирной организации здравоохранения животных» (МЭБ), изложенные в главе 4.8. Кодекса Здоровья наземных животных МЭБ [19], данные научных публикаций и обзоров представленные на сайте «National Center for Biotechnology Information». При этом использовали электронный поиск литературы, чтобы охватить публикации с 1964 до 2020 годы по проблематике лептоспироза у крупного рогатого скота и серова- ра Hardjo. Анализ публикаций включал отбор, рассмотрение результатов и оценку методологического качества отдельных оригинальных исследований и обобщающих обзорных работ. Синтез информации заключался как в обобщающей оценке в отношении поставленного вопроса нескольких сходных исследований, так и в указании пробелов, выявленных в работах по рассматриваемому вопросу.
Анализ документов провели традиционным методом с элементами контент-анализа в виде совокупности логических построений, направленных на раскрытие основного содержания. Результаты анализа выразили в виде обсуждения сравнительной схемы по предложенным мерам и рекомендаций.
Результаты исследований и их обсуждение. Leptospira borgpetersenii серовар Hardjobovis, согласно ст. 4.8.14 Кодекса МЭБ, относится к болезням или патогенным агентам категории 4 (согласно International Embryo Technology Society (IETS)), то есть к тем, в отношении которых научные исследования проводились или ведутся, и указывают на то, что пока невозможно сделать какие-либо выводы относительно уровня риска их передачи с эмбрионами «in vivo», или риск передачи через пересадку эмбрионов не может быть «незначительным», даже в том случае, если с эмбрионами обращаются должным образом в соответствии с Руководством IETS [19].
Согласно 4.8.5. Кодекса МЭБ, конечный уровень риска определяют три фазы снижения риска распространения болезней в процессе переноса эмбрионов, полученных «in vivo». Далее рассмотрим эти фазы по отношению к возбудителям лептоспироза у крупного рогатого скота.
Первая фаза снижения риска при переносе эмбрионов учитывает эпизоотическую ситуацию в стране, зоне и стадах-доноров по патогенным агентам, не включенным в категорию 1 IETS (ст. 4.8.14 [19]) и сами характеристики патогенов. Leptospira borgpetersenii серовар Hardjobovis является распространенной причиной лептоспироза крупного рогатого скота. Это один из наиболее важных сероваров, потому что крупный рогатый скот являясь основным хозяином может быть постоянным источником инфекции. Зачастую, пораженный скот не проявляет клинических признаков. Животные-носители, поддерживают инфекцию месяцы, годы или даже в течение всей жизни и эффективно передают лептоспиры другим животным (крупный и мелкий рогатый скот) и человеку. Крупный рогатый скот выделяет лептоспиры с мочой, репродуктивными жидкостями и выделениями из матки, тем самым загрязняя пастбища, питьевую воду и корм. Зараженная моча является основным источником заражения и передачи возбудителя. Зараженные абортирующие коровы также могут распространять лептоспиры истечениями из половых путей. Зараженные быки способны распространять инфекцию со спермой и заражать коров [10, 15].
С учетом того, что в отличие от быков-доноров, коровы-доноры не являются резидентами станций искусственного осеменения (то есть сроки карантинирования и создание однородной популяции доноров- эмбрионов специальными мерами тестирования/обработок/наблю- дения по стадийному допуску к отбору для них не описано в рекомендациях МЭБ в отличие от быков-доноров спермы) и их эпизоотический статус по патогенам, сопряженным с торговлей эмбрионами тесно связан со статусом стада [19] - первая фаза снижения риска для них наиболее значима.
В соответствии с требованиями РФ/ЕАЭС стада доноров должны быть свободны от лептоспироза в течение последних 3 месяцев* (Согласованная форма ветеринарного сертификата № НА-1334 в формате «Канада-РФ» требует 12 месяцев) [1, 2].
Механизм доказательства свободы стад крупного рогатого скота от лептоспироза может быть реализован за счет кампаний вакцинации и мониторинга эпизоотического статуса стада с применением методов лабораторной диагностики методами, рекомендованными МЭБ, которые для крупного рогатого скота имеют ряд ограничений [15]. Достаточно ли трех месяцев для доказательства свободы стад от лептоспироза крупного рогатого скота L. borgepetersenii серовар Hardjobovis и L. interrogans серовар Hardjoprajitno, по сравнению с другими лептоспирами, в отношении которых крупный рогатый скот не является носителем, - вопрос, на наш взгляд, дискуссионный.
Вторая фаза снижения риска при переносе эмбрионов использует международно-признанные процедуры обработки эмбрионов, которые изложены в Руководстве IETS. Согласно ст. 4.8.6. Кодекса МЭБ, антибиотики следует добавлять в среды, используемые для сбора, обработки, отмывки и хранения эмбрионов, как это рекомендовано в Руководстве IETS.
Согласно исследованиям, проведенным в Бразилии, была оценена эффективность методов обработки, рекомендованных (IETS) при пересадке эмбрионов для ооцитов крупного рогатого скота, созревших in vitro и подвергнутых экспериментальному воздействию Leptospira interrogans серовара Grippotyphosa. Результаты свидетельствовали, что подтверждена лишь частичная эффективность обработок, рекомендованных IETS в отношении патогена, что вероятно, зависит не только от вида возбудителя, но и вирулентности [11]. Несмотря на то, что для эмбрионов «in vivo» риски представляются ниже относительно эмбрионов «in vitro» [19], эффективность данного этапа по снижению риска в отношении Leptospira spp., на наш взгляд, нужно принимать с осторожностью, так как использованные в опытах добавки пенициллина 10000 МЕ/мл и стрептомицина 10 мг/мл по IETS не показали желаемой высокой эффективности к Leptospira spp. [11].
Исследования А. Bielanski и O. Surujballi на эмбрионах «in vivo» и «in vitro» показали, что жизнеспособные лептоспиры были только в эмбрионах, культивированных в среде без антибиотиков [5], однако добавление пенициллина и стрептомицина в среду с зараженными Leptospira borgpetersenii serovar Hardjobovis ооцитами и эмбрионами, полученными in vivo и in vitro, устраняет инфекцию и гарантирует, что эмбрионы не будут переносить патоген [5].
На наш взгляд, имеющиеся обоснованные экспериментальные данные о том, что, несмотря на присутствие Leptospira borgpetersenii серовар Hardjobovis в репродуктивном тракте животных-доноров и ассоциации ДНК возбудителя с эмбрионами в матке, передача этого заболевания вряд ли будет происходить при переносе эмбрионов, продуцируемых «in vivo» при надлежащей обработке [6], с другой стороны, в отношении Leptospira interrogans таких данных не получено, и данные не являются полевым исследованием, что, на наш взгляд, подтверждает некую неопределенность в отношении риска Leptospira borgpetersenii серовар Hardjobovis для эмбрионов «in vivo» и включению его в категорию 4 IETS.
Единые ветеринарные требования ЕАЭС при ввозе эмбрионов подчеркивают, чтобы импортируемые эмбрионы были отобраны, хранились и транспортировались в соответствии с рекомендациями Кодекса здоровья наземных животных МЭБ [2], а, следовательно, принимают рекомендованные IETS процедуры. В рамках согласованных Российской Федерацией форм ветеринарных сертификатов это всегда отражено в заключительных разделах [1].
В итоге, риск того, что лептоспироз сможет передаваться эмбрионами «in vivo», которые собирают у животных-доноров (в том числе инфицированных лептоспирами), когда для сбора и обработки эмбрионов используют рекомендованные IETS процедуры отмывки и используют среды с антибиотиками, эффективными против лептоспир, - представляется низким (но не устраняется полностью).
Третья фаза управления риском при переносе эмбрионов в отношении болезней, не включенных в категорию 1 IETS (Ст. 4.8.14 Кодекса МЭБ [19]), включает в себя снижение риска посредством:
Как отмечено, доноры в качестве дополнительной меры могут быть протестированы на лептоспироз с отрицательным результатом, согласно требованиям РФ/ЕАЭС, хотя и не оговорено на каком этапе будет проведено тестирование [2]. При этом тестирование с использованием метода индикации возбудителя или генома - менее предпочтительно, на наш взгляд, за счет несовершенства прямых методов детекции в отношении животных-носителей, которые в ряде случаев требуют 3-кратного отбора проб в том числе с применением провокации [12, 15, 20]. Изоляция лептоспир, и в частности серовара Hardjo может потребовать инкубации культур в течение 26 недель и зависит от количества организмов, присутствующих в образце [15]. Использование же серологических методов в вакцинированных поголовьях доноров представляется несколько ограниченным [8]. Тестирование доноров основным рекомендованным МЭБ методом (МАТ - тест микроагглютинации) в диагностическом титре 1:100 у поголовья крупного рогатого скота, являющегося носителями, не всегда позволяет установить инфицирование, а в случае вакцинации, или перенесенной инфекции (при лечении) - не представляет диагностической ценности на индивидуальном уровне. В частности, при применении МАТ у крупного рогатого скота (носителей серовара Hardjo) при диагностическом титре 1:100 - чувствительность теста составит всего 41%, и даже когда минимально значимый порог титра снизить до 1/10, чувствительность теста составит только 67% [15].
Как МАТ, так и изоляция лептоспир являются тестами, рекомендованными МЭБ для тестирования на индивидуальном уровне на лептоспироз животных, при этом имеющие свои существенные ограничения у крупного рогатого скота в отношении серовара Hardjo. Таким образом, у крупного рогатого скота на индивидуальном уровне тестирование рекомендованными МЭБ методами (МАТ и изоляция в культуре) не достигает высокой чувствительности и специфичности. Комбинация методов прямой и непрямой диагностики, хотя и может повысить прогностическую точность выбраковки животных, для практических целей (скрининга) представляется затратной с материальной и практической сторон.
Далее следует рассмотреть управление риском за счет мер, не охватываемых рекомендациями МЭБ (или охватываемых косвенно):
1. Обработка доноров антибиотиками, которые показывают эффективность в отношении носителей лептоспир или вакцинами, на наш взгляд, является также достаточно значимым вопросом для рассмотрения в качестве отдельных мер. Дело в том, что данные меры давно используются как альтернативные тестированию при ввозе живого скота в РФ/ЕАЭС и спермы крупного рогатого скота, несмотря на их ограниченность [2, 8].
Так, исследования изолятов лептоспир, проведенные за 80-летний период выделения от продуктивных животных различного географического происхождения в период с 1936 по 2016 годы, указывают на риск отказа некоторых антибиотиков при заражении высокими дозами как у животных, так и у людей [14]. В целом же различные представители Leptospira spp. показывают достаточно разнообразную чувствительность к антибиотикам в сериях опытов по определению чувствительности к антимикробным препаратам, проведенных in vitro [13], и признается их неоднородная чувствительность к противо- микробным препаратам in vivo, однако корреляция восприимчивости возбудителя in vitro к исходу в испытаниях по лечению лептоспироза отсутствует [16]. Рандомизированное контролируемое испытание, проведенное с целью оценки эффективности использования антибиотиков для лечения лептоспироза крупного рогатого скота, вызванного Leptospira borgpetersenii серовар Hardjo, показало, что успешное разрешение лептоспироза у крупного рогатого скота путем введения дигидрострептомицина-пенициллина G подтверждало результаты, полученные другими исследователями и показывало, что три других антибиотика (окситетрациклин, тилмикозин и цефтиофур) также были эффективны в отношении лептоспироза и могут быть использованы как заменители дигидрострептомицина, антибиотика, который больше не доступен для использования на продуктивных животных в Соединенных Штатах. Меж тем стоимость, безопасность и время отмены различных вариантов лечения должны учитываться [3]. Исследование Cortese V.S. с соавт., продемонстрировало способность тулатромици- на и цефтиофура в виде кристаллической свободной кислотной суспензии) избавлять от Leptospira borgpetersenii серовар Hardjo типа Hardjobovis (L. hardjobovis) экспериментально зараженный крупный рогатый скот. Обработка тулатромицином привела к очищению у всех животных (9 из 9) от L. hardjobovis в моче и почечной ткани, а обработка цефтиофуром в форме кристаллической свободной кислоты привела к очищению у 8 из 10 телок от организмов в моче и у всех 10 животных в почечной ткани [7].
Всё это свидетельствует, что обработка животных-доноров антибиотиками эффективными в отношении носителей лептоспир, позволяющая снизить вероятное выделение возбудителя у носителей могут быть приняты как удовлетворительные меры для доноров, но с отдельными ограничениями. Главное из которых - это то, что применение антибиотика у доноров должно показать эффективность в отношении лептоспир, а доказательство его эффективности следует рассматривать только при условии использования производителем и ветеринарной медициной подходов, принятых в доказательной медицине.
В проведенном мета-анализе J.M. Sanhueza c соавторами заключают, что один курс вакцинации против Leptospira borgpetersenii серовар Hardjobovis у крупного рогатого скота до заражения снижает риск выделения возбудителя с мочой, при детекции с использованием бактериологических посевов, с вероятностью в интервале 80,694,9%. Хотя показанная эффективность вакцин, как правило, была выше в исследованиях, где использовались моновалентные вакцины, чем в случае с вакцинами, включающими 2 и более серовара возбудителя, чтобы подтвердить значимость такого наблюдения необходимы дополнительные доказательства [18]. Полученные Rinehar C.L. с соавторами результаты свидетельствуют о том, что пятивалентная вакцина против лептоспир, содержащая L. interrogans серовар Hardjo типа Hardjoprajitno, может обеспечить защиту от заражения штаммом L. borgpetersenii серовар Hardjo типа Hardjobovis 203. Вакцинированные животные не выделяли лептоспир с мочой и не показывали инфицирование почек при вскрытии и микроскопии. При этом важно учесть перекрестную защиту от тех штаммов, которые распространены в полевых условиях [17]. Возможность защиты телят в раннем возрасте от заражения и колонизации лептоспирами тканей почек и репродуктивной системы и значительное сокращение выделения с мочой после заражения вплоть до 12 месяцев после вакцинации было показано Zimmerman A.D. с соавторами [21], однако результаты больше применимы к стадному, а не индивидуальному уровню.
К главным ограничениям вакцинации-доноров следует отнести необходимость перекрестной защиты от тех штаммов, которые распространены в полевых условиях до момента встречи с возбудителем [15], их негативное влияние на серологическую диагностику вакцинированных, а также недостаток точных данных о эффективности «срочной» вакцинации до отбора эмбрионов на индивидуальном уровне, так как общеизвестно, что вакцины против лептоспироза лечебным действием не обладают [15]. Вакцинопрофилактика строится на создании у животных иммунитета с раннего возраста, и эффективна в качестве профилактической меры на стадном уровне - до момента заражения/экспозиции. В целом же вакцинопрофилактика на стадном уровне может явиться действенным инструментом снижения риска присутствия в стадах носителей в случае внедрения программы вакцинации и тестирования с учетом оборота стада и потока животных по половозрастным группам. Доноры, происходящие из вакцинированных стад, не представляют риска носительства лишь в случае, когда с рождения у животного на индивидуальном уровне обеспечена перекрестная защита от штаммов, которые распространены в полевых условиях. Эффективность отдельных вакцин для крупного рогатого скота на индивидуальном уровне в отношении предотвращения инфицирования и выделения патогена во внешнюю среду лептоспир является наиболее важным при разработке программ профилактики лептоспироза в стадах на эндемичных территориях и для обеспечения защиты животных и человека в полевых условиях.
Таблица 1. Оценка дополнительных мер в отношении снижения риска распространения лептоспироза крупного рогатого скота при экспорте эмбрионов in vivo
| Мера/ угроза | Благополучие стад-доноров/ Вероятность носительства | ||
|---|---|---|---|
| 1 фаза снижения риска | |||
| Действующая мера РФ (ЕАЭС) | Требуется благополучие стад в течение 3 месяцев и тестирование животного на лептоспироз (прим.: не указаны сроки тестирования) | ||
| Дополнительная мера | Тестирование в стаде животного на лептоспироз | Срочная вакцинация доноров | |
| Ограничение (пробелы) | Ограниченность серологических методов у крупного рогатого скота (вакцинированных стад и у носителей) и относительно низкая чувствительность прямых методов у носителей (требуется серийный отбор проб и провокация). Значительное время, затрачиваемое на изоляцию возбудителя. | Вакцины не обладают лечебным эффектом. Требуется программа вакцинации на уровне стада (создание популяционного иммунитета) и обеспечении перекрестной защиты от штаммов, которые распространены в полевых условиях. | |
| Заключение | Сомнительно. Имеются существенные ограничения рекомендованных МЭБ методов тестирования для крупного рогатого скота на индивидуальном уровне (МАТ и изоляция в культуре). Тестирование крупного рогатого скота более приемлемо на стадном уровне (например, при формировании партии животных на экспорт или мониторинга стад). | Не приемлемо на индивидуальном уровне. Вакцины не обладают лечебным эффектом. Иммунизация обеспечивает защиту в полевых условиях при иммунизации до момента инфицирования. | |
| 2 фаза снижения риска | |||
| Действующая мера РФ/ЕАЭС | Требуется чтобы эмбрионы были отобраны, хранились и транспортировались в соответствии с рекомендациями Кодекса здоровья наземных животных МЭБ | ||
| Доп. мера | Использование рекомендаций IETS по отмывке к 4 категории риска | Обработка антибиотиками доноров | |
| Ограничение (пробелы) | Имеются лишь отдельные экспериментальные данные по переносу эмбрионов при надлежащей обработке и эффективности препарата в среде в отношении лептоспир | Влияет на вероятность контаминации исходного материала при доказанной эффективности препарата | |
| Заключение | Данные ограничены отдельными исследованиями. Не может рекомендоваться в качестве основной меры | Косвенное влияние. Не может рекомендоваться в качестве основной меры | |
| 3 фаза снижения риска | |||
| Действующая мера РФ/ЕАЭС | Тестирование животного на лептоспироз | ||
| Доп. мера | Тестирование доноров непосредственно перед отбором | Обработка антибиотиками доноров | |
| Ограничение (пробелы) | Ограниченность серологических методов у крупного рогатого скота (в вакцинированных стадах и у носителей) и относительно низкая чувствительность прямых методов у носителей (серийный отбор проб с провокацией. Время на изоляцию возбудителя). | Требуется доказанная эффективность препарата. | |
| Заключение | Сомнительно. Имеются существенные ограничения рекомендованных МЭБ методов тестирования для крупного на индивидуальном уровне. Тестирование крупного рогатого скота более приемлемо на стадном уровне (например, при формировании группы доноров на станциях искусственного осеменения). | Приемлемо при доказанной эффективности препарата. | |
В таблице 1, мы обобщили предполагаемые дополнительные меры в отношении лептоспироза крупного рогатого скота при экспорте эмбрионов in vivo с указанием их пробелов по отношению к трём фазам снижения риска, рекомендованным МЭБ [19].
Заключение. Тестирование доноров на лептоспироз в качестве меры методами, рекомендованными МЭБ (МАТ и изоляция) сильно ограничено по чувствительности, специфичности, сложности пробоот- бора и временным затратам. Достаточность международно-признанных процедур (IETS) обработки эмбрионов (отмывка и использование сред с антибиотиками) ограничено отдельными исследованиями в отношении отдельных лептоспир. Хотя в ряде работ результаты и обнадеживают, это не может рекомендоваться в качестве единственной достаточной меры и требует дальнейшего изучения с разработкой режимов обработки эмбрионов для избавления от патогена, что на наш взгляд представляется наиболее перспективным. Лечебным эффектом вакцинация крупного рогатого скота против лептоспироза не обладает, поэтому рекомендации по вакцинации доноров «до отбора эмбрионов» нельзя оценивать, как приемлемые. Таким образом, для доноров «in vivo» эмбрионов в качестве дополнительной меры из всех 11 рассмотренных выше, можно рекомендовать обработку антибиотиком животных-доноров по схемам с доказанной эффективностью препарата в отношении лептоспир (дозировка/кратность/время полной элиминации возбудителей из организма донора).
Список литературы:
Резюме. В работе представлен анализ ветеринарно-санитарных мер по лептоспирозу, при импорте в Российскую Федерацию эмбрионов крупного рогатого скота, обсуждены рекомендации по снижению риска, сопряженного с лептоспирозом при торговле эмбрионами крупного рогатого скота, представленные в Кодексе здоровья наземных животных МЭБ, так и не оговоренные МЭБ. Проведена оценка риска, учитывающая три фазы управления при пересадке эмбрионов, определяющая конечный уровень риска распространения болезней в процессе переноса эмбрионов, полученных «in vivo». Критически оценена приемлемость и обоснованность дополнительных мер по лептоспирозу крупного рогатого скота при экспорте эмбрионов «in vivo», таких как вакцинация коров-доноров, обработка коров-доноров против лептоспироза антибиотиками, тестирование коров-доноров при допуске к отбору эмбрионов и проведение манипуляций с эмбрионами с использованием процедур, рекомендованных Международным обществом по переносу эмбрионов. Акцентировано внимание на особенностях протекания лептоспироза у крупного рогатого скота в отличие от других восприимчивых видов, выражающихся в высокой вероятности носительства Leptospira borgepetersenii серовар Hardjobovis и Leptospira interrogans серовар Hardjoprajitno, несовершенстве методов лабораторной диагностики на индивидуальном уровне и необходимости дальнейших изучений режимов манипуляций с эмбрионами с использованием процедур отмывки в средах с антибиотиками, как наиболее перспективных. Вакцинация против лептоспироза крупного рогатого скота оценена авторами как надежный инструмент по управлению на уровне стад, но не на индивидуальном уровне животных-доноров. По результатам анализа и оценки, в качестве дополнительной меры, в настоящих условиях изученности проблемы, по отношению к коровам-донорам, обоснована и рекомендована обработка их антибиотиком с доказанной эффективностью препарата в отношении возбудителя лептоспироза.
Ключевые слова: крупный рогатый скот, лептоспироз, "in vivo"-эмбрионы крупного рогатого скота, коровы-доноры, ветеринарно-санитарные меры, импорт, международная торговля, анализ риска, управление рисками, кодекс здоровья наземных животных.
Сведения об авторах:
Оганесян Андрей Серожович, кандидат ветеринарных наук, заведующий сектором анализа риска информационно-аналитического центра Управления ветнадзора ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: oganesyan@arriah.ru.
Баскакова Наталья Евгеньевна, юрисконсульт сектора анализа риска информационно-аналитического центра Управления ветнадзора ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: baskakova@arriah.ru.
Мищенко Владимир Александрович, доктор ветеринарных наук, профессор, главный научный сотрудник лаборатории профилактики болезней свиней и рогатого скота ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: mishenko@arriah.ru.
Черных Олег Юрьевич, доктор ветеринарных наук, доцент, профессор кафедры микробиологии, эпизоотологии и вирусологии ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-918-4956659; e-mail: gukkvl50@kubanvet.ru.
Кривонос Роман Анатольевич, кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры паразитологии, ветсанэкспертизы и зоогигиены ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; e-mail: uv@krasnodar.ru.
Ответственный за переписку с редакцией: Мищенко Алексей Владимирович, кандидат ветеринарных наук, старший научный сотрудник информационно-аналитического центра Управления ветнадзора ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: mischenko@arriah.ru.
http://vetkuban.com/num6_202116.html