Характеристика основных возбудителей паразитарных заболеваний крупного рогатого скота в Республике Бурунди

УДК 619:576.89]:636.2(675.97)
DOI 10.33861/2071–8020-2026-2-14-18

Обзор предметного поля

Бучуми Эсперанс, Лысенко А. А., Черных О. Ю. Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение
высшего образования «Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина», г. Краснодар

Аннотация. Республика Бурунди – это небольшое государство на востоке Африки, традиционным предметом экспорта является растительная продукция. Согласно официальным данным в сельскохозяйственном секторе, в 2019 году прибавка внутреннего валового продукта составила 1,8%. Однако мировой кризис и пандемия коронавирусной инфекции не позволили выполнить поставленные цели. Правительство ставит перед животноводством Республики задачу к 2030 году увеличить внутренний валовой продукт и достичь продовольственной независимости. Наметилась тенденция к увеличению поголовья крупного рогатого скота. Однако жаркий климат, высокая влажность воздуха, слабая технологическая дисциплина в животноводстве, ряд других факторов и конечно целый ряд заразных заболеваний животных затрудняют выполнение поставленных задач. Нами проведен анализ состояния по распространению паразитарных заболеваний крупного рогатого скота в Республике Бурунди для выявления наиболее экономически затратных болезней. В результате исследований и проведения эпизоотологического анализа состояния распространения паразитарных болезней выявлено, что одной из распространенных болезней является кокцидиоз. При анализе распространения кокцидиоза в республике авторами отмечено, что наибольшее число случаев в Бурунди выявлено в провинции Каянза (более 80% всех случаев заболевания кокцидиозом в стране). Заболевание среди молодняка достигает 100%. Это обусловлено антисанитарными условиями содержания сельскохозяйственных животных. Среди вызываемых простейшими болезней помимо кокцидиоза отмечается тейлериоз и трипаносомоз. Высокая заболеваемость в течение ряда лет регистрируется при нематодозах, таких как аскаридоз, стронгилоидоз. Большую проблему для крупного рогатого скота представляет чесотка и стригущий лишай. В результате сбора данных нами выявлены такие факты как: низкая санитарная культура, нарушение сроков дезинфекции, дезинсекции и дератизации, а также плановых вакцинаций и схем лечения. Также имели место случаи свободного выпаса животных. Все это вместе создает благоприятные условия для распространения заразных болезней. Нами разработаны и утверждены в Министерстве сельского хозяйства Республики Бурунди комплексные рекомендации по диагностике, профилактике и лечению кокцидиоза крупного рогатого скота, выполнение которых в условиях ферм будут способствовать повышению уровня животноводства и позволят снизить ущерб от заразных заболеваний.

Ключевые слова: Республика Бурунди, крупный рогатый скот, паразитарные болезни, диагностика, кокцидиоз, бабезиоз, трипаносомоз, тейлериоз, аскаридоз, строингилоидоз, профилактика, лечение.

В тропических регионах одной из проблем, препятствующих развитию животноводства, является инвазирован-ность жвачных животных возбудителями паразитарных заболеваний, что приводит к значительным экономическим потерям из-за заболеваемости и смертности, усугубляемым стоимостью химической борьбы.

Географическое положение Республики Бурунди, по-видимому, способствует развитию паразитарных патогенов, имеющих важное ветеринарное значение. Большинство животных восприимчивы к различным паразитам – от простейших до гельминтов. Большая часть этих патогенов регистрируется у жвачных животных. Учитывая важность этих видов для развития животноводства, заболеваемость является ограничивающим фактором их распространения. Еще одним важным аспектом, который следует учитывать, является близость этих животных к населенным пунктам, что способствует быстрому распространению зоонозов [1, 2].

К возбудителям паразитарных заболеваний крупного рогатого скота в Республике Бурунди относятся представители простейших, нематод, цестод, клещей и насекомых.

Нами были выделены заболевания, которые вызывают в республике наибольший экономический ущерб, затрудняя развитие животноводства в стране.

Согласно отчетам Главного управления сельского хозяйства и животноводства Республики Бурунди, поголовье крупного рогатого скота в стране (табл. 1, рисунок 1) на протяжении 7 лет остается примерно на одном уровне (782 000 голов), несмотря на усилия правительства, направленные на достижение продовольственной независимости и значительного увеличения поголовья. Одним из ключевых факторов, тормозящих увеличение поголовья и повышения его продуктивности, являются инвазионные болезни. Из 13 наименований паразитарных заболеваний, по которым ветеринарная лаборатория проводит исследования, 46,1% вызываются простейшими – кокцидиоз, тейлериоз, трипаносомоз, бабезиоз, анаплазмоз и балантидиоз. В структуре исследований паразитологического отдела 30,8% занимают нематодозы – аскаридоз, анкилостомоз, телязиоз и стронгилоидоз. Это только наиболее экономически затратные заболевания.

 

Рис 1. Динамика поголовья крупного рогатого скота в Республике Бурунди в 2018-2025 годах

Основное ветеринарное значение среди простейших имеют кровепаразиты, которые широко распространены из-за особенностей климата и нарушений технологии содержания животных.

Заражение крупного рогатого скота Anaplasma marginale, возбудителем анаплазмоза крупного рогатого скота, было подтверждено в Бурунди впервые в 1989 году микроскопическими и серологическими методами; 42-62% внешне здорового крупного рогатого скота были инфицированы A. marginale, остальные случаи протекали бессимптомно [3, 4].

Возбудителями являются Anaplasma marginale Theiler, 1910 и A. centrale Theiler, 1912 – круглые, размером 0,2…1,2 мкм включения в эритроцитах, иногда их обнаруживают в лейкоцитах и тромбоцитах. Расположены в эритроцитах преимущественно на периферии, иногда ближе к центру. В одном эритроците может быть от одного до четырех возбудителей. Паразитемия составляет от 3 до 40 %, в отдельных случаях может достигать 60 % [5].

При электронной микроскопии было установлено, что у ана-плазм отсутствуют цитоплазма и ядро. Также были выявлены так называемые инициальные тельца, или микроколонии. Это округлые или овальные образования, покрытые тонкой мембраной. Кроме того, сама микроколония окружена двухслойной плазменной мембраной, содержимое которой имеет вид гранулированной, лентовидной или кольцевидно-трубчатой структуры. При постановке диагноза учитывают эпизоотологические данные, симптоматику и результаты микроскопии мазков крови, окрашенных по Романовскому. Диагностика анаплазмоза (особенно в начале болезни и при анаплазмоносительстве) зачастую бывает затруднена. Своеобразная мелкая форма возбудителя в виде точки и возможное наличие в эритроцитах здоровых животных различных включений (тельца Жолли и др.) могут приводить к постановке ложных диагнозов. Именно эти трудности в идентификации анаплазм вызвали необходимость изыскивать специфические и более эффективные средства диагностики. Для диагностики анаплазмоза и анаплазмо-носительства в лаборатории протозоологии ВИЭВ разработаны и используются серологические методы (РДСК, РНГА и ИФА).

Также было выявлено, что А. marginale и А. ovis имеют общие антигены, что позволило изготавливать антиген из возбудителя анаплазмоза [6].

При диагностике анаплазмоза крупного рогатого скота при экспериментальных исследованиях также применяют ПЦР для выявления возбудителя в крови больных и переболевших животных, а также для индикации возбудителей в иксодовых клещах и насекомых. Кроме того, метод может использоваться для изучения нуклеотидного состава ДНК и молекулярно-биологических свойств и особенностей различных штаммов и изолятов возбудителей.

Таблица 1. Численность поголовья крупного рогатого скота в Республике Бурунди за период с 2018 года по 2025 год

Численность поголовья по годам	2018	2019	2020	2021	2022	2023	2024
	771875	790703	784141	784141	779457	794501	788063

Таблица 2. Данные по паразитарным заболеваниям в Республике Бурунди за период с 2018 по 2025 гг. (по данным ветеринарной лаборатории Республики Бурунди)

Наименование заболевания	Годы
	2018	2019	2020	2021	2022	2023	2024
Аскаридоз	10 263	10 499	10 591	8 465	8 398	7 239	5 752
Анкилостомоз	50	58	0	59	0	29	89
Монезиоз	272	81	72	14	46	0	0
Тейлериоз	29 128	28 270	34 390	24 789	22 918	17 870	13 128
Трипаносомоз	1 848	2 190	1 693	955	464	624	309
Бабезиоз	2 589	702	951	416	346	209	1 836
Анаплазмоз	33	24	24	24	22	37	0
Кокцидиоз.	3 218	5 902	3 643	2 964	2 181	16 917	18 016
Балантидиоз	112	213	484	218	12	167	56
Чесотка	958	1 094	27	1 492	470	956	1 010
Трихофития	216	1 979	67	1 074	168	146	86
Телязиоз	285	840	17	283	271	160	494
Стронгилоидоз	21 066	26 612	246 398	17 900	11788	6 123	93 050

К сожалению, в ветеринарной лаборатории республики ПЦР-ис-следования не проводятся, так как на сегодняшний день отсутствуют специалисты, которые могли бы проводить подобные исследования, хотя оборудование уже приобретено правительством.

Наиболее эффективными методами лечения анаплазмоза являются антибиотики тетрациклинового ряда (окситетрациклин, тер-рамицин, биомицин). Также назначают препараты из группы фтор-хинолонов (ципрофлоксацин, энрофлоксацин) согласно инструкции по их применению [6, 7].

Одновременно с назначением этиотропных препаратов животным предоставляют полный покой, дают воду, сочные корма и соль-лизунец. Показано применение микроэлементов и симптоматических средств. Больных животных и анаплазмоносителей рекомендовано выделять в специальные группы [8].

Профилактика анаплазмоза в большей степени основана на защите животных от нападения переносчиков анаплазм – клещей и кровососущих насекомых. Обрабатывают животных акарицидами в соответствии с действующими инструкциями и наставлениями. Следует также соблюдать правила асептики и антисептики при проведении массовых ветеринарно-зоотехнических мероприятий [9].

Бабезиоз крупного рогатого скота распространен на всех континентах мира, где обитают клещи Rhipicephalus spp., являющиеся переносчиками этого заболевания [10]. Babesia bigemina и Babesia bovis распространены в Южной и Центральной Америке, Европе, Африке, на Ближнем Востоке, в Центральной Азии и Австралии. Но наибольшее распространение заболевание получило в тропических и субтропических регионах [11]. В Африке бабезиоз вызывают в основном Babesia bigemina и Babesia bovis. Распространенность бабезиоза крупного рогатого скота варьируется от континента к континенту, от страны к стране и от региона к региону. Общая распространённость бабезиоза крупного рогатого скота во всём мире оценивается в 29%, а серологическая распространённость – в 50%.

В Бурунди в целом заражение крупного рогатого скота Babesia bigemina, возбудителем бабезиоза крупного рогатого скота, было впервые подтверждено в 1989 году микроскопическими и серологическими методами. Общая распространённость ивазии B. bigemina оценивалась в 1,3%, при этом у 1,5-3% зараженных наблюдались клинические признаки заболевания; остальные случаи протекали бессимптомно [12].

Распространение бабезиоза крупного рогатого скота, вызванного B. bigemina, тесно связано с наличием клеща Boophilus decoloratus.

Выявление активных случаев бабезиоза в первую очередь основано на нескольких диагностических методах. Традиционным методом исследования на бабезиоз является прямое микроскопическое исследование. Оно позволяет идентифицировать возбудителя в организме инфицированного хозяина. Это достигается путем исследования толстых и тонких мазков крови с последующим их окрашиванием по Романовскому или красителем Гимза. Толстые мазки позволяют обнаружить до одного паразита на 106 эритроцитов [13].

Микроскопическое исследование остается в Бурунди наиболее экономичным и быстрым методом выявления паразитов Babesia. Тонкие мазки крови, окрашенные по Гимза, являются традиционным и референтным методом идентификации и представляют собой идеальный метод для дифференциации видов. Однако при хроническом носительстве диагностическая эффективность метода снижается [12, 14].

Наиболее чувствительным и специфическим методом выявления бабезиоза является полимеразная цепная реакция. Как и многие другие заразные заболевания, бабезиоз также вызывает лихорадку и анемию.

Успешное лечение бабезиоза зависит от использования эффективных препаратов и раннего выявления. Трипановый синий, впервые использованный против B. bigemina, но не действующий на B. bovis, был одним из самых эффективных препаратов для лечения бабезиоза крупного рогатого скота. Он используется редко, поскольку вызывает изменение цвета кожи животных. В тропиках в качестве бабезицида в настоящее время используется димина-зен ацетурат. Он был изъят с рынка в Европе по маркетинговым причинам. Имидокарб, который в основном используется для животных, является еще одним из эффективных препаратов для лечения бабезиоза. Этот препарат также может использоваться для профилактики бабезиоза и анаплазмоза. К сожалению, имидо-карб может задерживаться в тканях и органах животных в течение длительного времени.

Однако производные акридина также могут быть использованы в качестве эффективных препаратов. Многие европейские страны несколько лет использовали бабезициды, амикарбалид, диминазена ацетурат и имидокарба дипропионат против бабезиоза крупного рогатого скота, но сульфат хинурония и амикарбилид были сняты с производства из-за проблем с безопасностью производства. Комбинация имидокарбамид дипропионата и окситетрациклина является наиболее эффективным средством лечения бабезиоза мелких жвачных животных. Кроме того, в тяжелых случаях требуется поддерживающая терапия. Витамин Е также может использоваться в качестве поддерживающей терапии, поскольку он снижает окислительный эффект бабезии за счет повышения антиоксидантной активности.

Профилактика и контроль в мире несколько стран не смогли полностью взять под контроль бабезиоз крупного рогатого скота, несмотря на наличие живой аттенуированной вакцины. Это подчеркивает важность быстрых мер вакцинации для предотвращения развития острой формы заболевания, а также распространения паразита в неэндемичные районы. Борьба с бабезиозом крупного рогатого скота в настоящее время находится под угрозой из-за изменения климата, которое влияет на развитие и распространение переносчика [15].

Контроль этого заболевания основан на точной диагностике, оптимальном лечении и профилактике бабезиоза. Излеченные животные сохраняют иммунитет. Паразит может сохраняться в периферической крови в течение нескольких лет у B. bovis и нескольких месяцев у B. bigemina.

Согласно отчетам США, бабезиоз можно контролировать и искоренить путем уничтожения клеща-хозяина. Это достигается путем применения акарицидов каждые две-три недели. В странах, где искоренение невозможно, борьба с клещами может снизить заболеваемость. Химиотерапия является еще одним важным методом борьбы с бабезиозом крупного рогатого скота, как в полевых условиях, так и для борьбы с искусственно вызванными инфекциями.

В некоторых частях мира химиотерапия необходима для искоренения и профилактики бабезиоза. Инфицированных животных следует как можно скорее лечить противопаразитарными препаратами в странах, где заболевание эндемично. Профилактическая вакцинация животных считается наиболее эффективным способом снижения потерь от бабезиоза крупного рогатого скота.

Установлено, что климат в Республике Бурунди имеет тропический влажный тип, на который влияет высота над уровнем океана, которая колеблется от 774 м до 2670 м. Для страны характерно чередование сезона дождей, которые обычно идут с октября по май, и сухого сезона, который длится с июня по сентябрь. Среднегодовое количество осадков колеблется от 2000 мм на возвышенностях до почти 1000 мм на равнинах. Среднее количество осадков для Бурунди составляет 1274 мм [16].

В Республике Бурунди среди крупного рогатого скота кокцидиоз достигает 2,6%. Кокцидиоз может достигать 100% поражения в течение первых недель жизни животных, но особенно тяжело протекает это заболевание у молодняка, вызывая поражение кишечника, диарею и смерть [17]. Способствуют широкому распространению болезни санитарные нарушения. В этом случае отход молодняка может достигать 30% [18].

Нами проведен анализ распространения кокцидиоза в различных провинциях страны. При анализе распространения кокцидиоза наибольшее число случаев из 18 провинций Республики Бурунди выявлено в провинции Каянза – более 80 % всех случаев заболевания кокцидиозом. Особенностью провинции Каянза является большое поголовье животных, которые содержатся в антисанитарных условиях и очень высокая влажность воздуха. Кроме этого, ветеринарные специалисты плохо проводят ветеринарно-санитарные обработки.

Нами в результате проведения эпизоотологического обследования Республики Бурунди на наличие различных заразных болезней крупного рогатого скота установлено, что среди паразитарных заболеваний наибольшая проблема – это кокцидиоз молодняка крупного рогатого скота, который достигает 2,6 % поголовья.

Ввиду антисанитарных условий содержания и высокой влажности это заболевание протекает тяжело, а летальность достигает среди молодняка 30%. Основные причины смерти телят – это интоксикация и поражение кишечника [17].

Наибольшее число случаев из 18 провинций Республики Бурунди выявлено в провинции Каянза – более 80% всех случаев заболевания кокцидиозом.

Нами предложена новая схема для ферм Республики Бурунди при лечении телят, заболевших кокцидиозом. Это дача больным животным препарата ампролиум в дозе 10 мг/кг в течение 5 дней внутрь с кормом. При таком подходе заболевание протекает не более 5 дней [9].

Тейлериоз вызывается простейшим паразитом Theileria parva, которое является лимфопролиферативным заболеванием крупного рогатого скота, и передается бурым ушным клещом Rhipicephalus appendiculatus. Отчеты о здоровье животных указывают на большое количество клинических случаев тейлериоза в Бурунди (табл. 1) при этом ежегодно заболевает более 5% поголовья крупного рогатого скота.

Более ранние исследования, проведенные в Бурунди, показали распространенность тейлериоза в диапазоне от 10,9 до 29,9% и 48,5-62,8% в зависимости от метода тестирования. Поскольку защита от тейлериоза иногда зависит от вида паразита, были разработаны комбинации или «коктейли» штаммов, обеспечивающие значительную защиту от гетерологичного заражения в полевых условиях. Наиболее широко используется трёхвалентный «коктейль» Muguga, состоящий из штаммов Theileria parva Muguga, Kiambu 5 и трансформированных штаммов Serengeti. Этот «коктейль» широко используется в Восточной Африке, но пока не применялся в Бурунди. С 1987 года на отдельных территориях Бурунди применялась система профилактики с использованием местных штаммов Theileria parva, включающих изоляты Gatumba Gitega и Ngozi, но в 1993 году она была прекращена из-за гражданской войны.

Трипаносомоз – трансмиссивная болезнь, вызываемая простейшими рода Trypanosoma. По современной систематике представители этого рода относятся к эукариотам, к семейству Trypanosomatidae, подотряду Trypanosomatina, отряду Kinetoplastida, классу Zoomastigophorea, подклассу Mastigophora, подтипу Sarcomastigophora, типу Protozoa. Переносчиком трипано-сомозов крупного рогатого скота являются мухи из рода Glossina (цеце).

В этом отношении африканский трипаносомоз животных представляет собой серьёзное препятствие для экономического развития стран Африки к югу от Сахары, заражённых мухой цеце, включая Кот-д’Ивуар. В Кот-д’Ивуаре потери производительности труда из-за африканского трипаносомоза животных в 1970-х годах составляли около 30%.

Диагностика трипаносомоза основывается на комплексном подходе, учитывающем клинические признаки, эпидемиологические данные и патологические изменения. Однако для подтверждения диагноза необходимо установить возбудителя. Для этого под микроскопом исследуют каплю крови, смешанную с небольшим количеством физиологического раствора, или готовят мазки крови из образцов периферических сосудов или поверхностных лимфатических узлов, которые затем окрашивают по методу Романовского. При вскрытии животных трипаносомы могут быть обнаружены в перитонеальной, плевральной, перикардиальной и спинномозговой жидкостях.

Серологические тесты (общий анализ крови, иммунофлуоресценция и ИФА) являются эффективными и надежными методами. Биологические анализы часто проводят на лабораторных животных (белых мышах и крысах).

Лечение специфическое, симптоматическое и патогенетическое. Среди используемых специфических терапевтических средств – диминазена ацетурат в дозе 3,5 мг/кг внутримышечно в виде 7% раствора. Это лечение эффективно против штаммов трипаносом, устойчивых к другим препаратам. Наганин (сурамин) вводят внутривенно в дозе 10 мг/кг в виде 10% водного раствора.

Этидиум вводят внутримышечно в дозе 1 мг/кг в виде 2,5% водного раствора. 2-4% раствор сурамина вводят подкожно или внутримышечно в дозе 2-2,5 мг/кг. Отмечено появление штаммов трипаносом, устойчивых к существующим химиотерапевтическим препаратам, что осложняет внедрение эффективных мер по борьбе с заболеванием. Это явление наблюдается при многократном введении одного и того же препарата или при снижении дозы препарата у животных.

Больных животных изолируют, обеспечивают доступом к свежей траве и воде, кормят обезжиренным молоком или сывороткой. Вводят кардиопрепараты (сульфокамфокаин, кофеин, камфору), 40%-й раствор глюкозы, 10%-й раствор хлорида кальция внутривенно, витамины (группы В, аскорбиновая кислота) и, при необходимости, слабительные и стимуляторы пищеварения.

В районах, подверженных риску заражения трипаносомозом животных, профилактические меры должны быть направлены на защиту скота от укусов насекомых (мух цеце, ядовитых древесных мух, слепней), переносящих возбудитель. Для этой цели эффективен Стомоксин (20%-й раствор перметрина). Этот препарат устойчив к солнечному свету и обладает пролонгированным действием.

Аскаридоз – заболевание характеризуется паразитированием половозрелых особей в тонком кишечнике, миграцией личинок и повреждением внутренних органов и сопутствующими аллергическими и токсическими реакциями. Разные виды принадлежат к надсемейству Ascaridoidea, семейству Ascaridae и вызывают заражение различных видов теплокровных. Ascaris lumbricoides – паразит человека и других приматов, Ascaris suum – паразит свиней и диких кабанов, Parascaris equorum – паразит лошадей и других представителей семейства лошадиных, а Toxascaris leonina – паразит хищников (собак, кошек и др.). Toxocara vitulorum – это крупный белый червь (самки 25-30 см, самцы 20-25 см), обитающий в тонком кишечнике телят младше 6 месяцев. Данный вид нематоды обнаружен в Республике Бурунди и вызывает значительный отход молодняка. Телята старшего возраста устойчивы к инвазии благодаря развитому приобретенному иммунитету. Диагностика токсокароза телят живыми гельминтами основывается на исследовании кала по методу Фюллеборна или на обнаружении взрослых паразитов в фекалиях. Также учитываются данные об эпизоотиях и основные клинические признаки этого гельминтоза. Посмертный диагноз устанавливается путем идентификации токсокар в кишечнике телят. Также может наблюдаться неприятный запах мяса (напоминающий эфир или хлороформ), особенно заметный при приготовлении продукции из телятины, зараженной данными нематодами.

Клинические признаки заражения Toxocara vitulorum можно классифицировать как легкие, средние и тяжелые.

Легкая форма заражения протекает бессимптомно. Признаки заражения можно регистрировать только средние и тяжелые.

Средняя степень заражения характеризуется запорами или калом, смешанным со слизью.

Тяжелая форма заражения характеризуется частой диареей, атаксемией и, в конечном итоге, смертью.

После миграции личинок наблюдаются энтерит, гепатит и миозит. Значительные изменения, вызываемые Toxocara vitulorum в кишечнике, включают петехии, геморрагические поражения, отеки и уменьшение толщины кишечной стенки. Также это вызывает изменение цвета печени (темно-коричневый). Значительные изменения могут наблюдаться и в других органах.

Лабораторная диагностика проводится путем исследования кала. Яйца Toxocara vitulorum чрезвычайно легко распознать; кроме того, это очень плодовитые черви, поэтому диагностика не представляет трудностей. Инвазия считается значительной, если исследование кала показывает содержание более 100 000 яиц на грамм кала. Следует помнить, что у телят диагностику следует проводить в первую очередь в возрасте от 3 до 10 недель, оптимальном периоде для выделения паразитов.

Токсокароз телят необходимо дифференцировать от кокцидиоза. Как правило, вышеупомянутые заболевания поражают животных позже, чем телята заболевают аскаридозом, а стронгилоидоз является заболеванием пастбищ. Однако острый кокцидиоз можно спутать с синдромом аскаридозной дизентерии, особенно потому, что она может поражать очень молодых животных, даже до отъема от матери, и очень распространен среди сельскохозяйственных животных в Африканских странах, в том числе и Бурунди. Однако острый кокцидиоз – это летнее заболевание, и его симптомы отличаются от симптомов аскаридозной дизентерии тем, что инфицированные животные выделяют сгустки крови, чего не наблюдается у животных с аскаридозом [18].

Токсокары обладают низкой устойчивостью к антигельминтным препаратам и даже к слабительным (сульфат магния, глауберова соль). Для дегельминтизации телят с токсокарозом рекомендуются сульфат пиперазина, гексахлорэтан, фторсиликат натрия и сантонин. Сульфат пиперазина адипинат, вводимый с молоком в дозе 0,5 мг/кг массы тела, который полностью уничтожает возбудителей у телят. Гексахлорэтан вводят в дозе 0,2 мг/кг массы тела дважды в день с интервалом в 10 дней. Фторсиликат натрия вводят в дозе 0,03 мг/кг массы тела дважды в день в течение двух последовательных дней. Сантонин вводят в дозе 0,02 мг/кг массы тела, после чего вводят 10%-ный раствор глауберовой соли из расчета 50-150 мл на животное.

Основные профилактические меры: регулярная уборка и дезинфекция стойл и площадок для выгула, биотермическая дезинфекция навоза за пределами фермы, изоляция стельных коров от телят в возрасте от 1 до 4 месяцев и дегельминтизация телят с 20-дневного возраста для предотвращения клинических проявлений заболевания и его распространения в окружающей среде [19].

Стронгилоидоз распространен в тропических, субтропических и умеренных зонах и поражает значительное количество животных.

Этот паразит необычен, тем что эндемичен для нескольких регионов мира и может размножаться в организме человека. Это приводит к непрерывному аутоинфицированию. Он был обнаружен впервые у бабуинов на африканском континенте. Стронгило-идоз крупного рогатого скота – опасное паразитарное заболевание молодняка (обычно до 3-6 месяцев), вызываемое нематодой Strongyloides papillosus, поражающей тонкий кишечник. Болезнь проявляется диареей, истощением, дерматитами и пневмонией из-за миграции личинок. Основная профилактика включает дегельминтизацию маточного поголовья и соблюдение санитарных норм.

Strongyloides papillosus – это круглый червь, вызывающий стронгилоидоз. Это распространенное заболевание крупного рогатого скота и мелких жвачных животных.

Паразит обитает в тонком кишечнике и может достигать 4,2 мм в длину. Самка откладывает от 17 до 25 яиц. Эти паразитические круглые черви могут размножаться несколькими способами:

• прямой – личинки вылупляются из яиц, содержащихся в фекалиях, и проникают в почву или навоз; там они развиваются в течение трех дней, затем возвращаются в кишечник, где превращаются во взрослых червей;
• непрямой – личинки проникают в почву, развиваются и размножаются; если условия жизни ухудшаются, новые личинки возвращаются к животному;
• кишечный – личинки вылупляются непосредственно в кишечнике и превращаются во взрослых нематод; этот способ развития чаще всего связан с другими заболеваниями пищеварительной системы.

Диагноз ставится на основании копрологического исследования с учётом клинико-эпизоотологических данных. Для дегельминтизации крупного рогатого скота применяют ряд антгельминтиков, например тиабендазол по 0,01 г/кг однократно в смеси с кормом, индивидуально или групповым методом, фенбендазол в форме панакура – 0,01 г/кг массы тела однократно в смеси с кормом, индивидуально или групповым способом.

Профилактические мероприятия включают: ежедневную уборку навоза, дезинвазию помещений и предметов ухода за животными, дегельминто-копроскопическое обследование молодняка в первые 2 месяца после рождения, а маточного поголовья – во 2-й половине стельности, профилактическую дегельминтизацию маточного поголовья перед постановкой на стойловое содержание – по результатам обследования.

Заключение. При анализе состояния зараженности крупного рогатого скота в Республике Бурунди возбудителями паразитарных заболеваний, по данным ветеринарной лаборатории страны, выявлен целый ряд паразитов, вызывающих значительный экономический ущерб и сдерживающих дальнейшее развитие животноводства республики. Это такие паразитические простейшие (46,1%) как кокцидиоз, тейлериоз, трипаносомоз, бабезиоз, анаплазмоз и балантидиоз. Четыре заболевания, исследуемые в лаборатории, относятся к нематодам (аскаридоз, анкилостомоз, телязиоз и стронгилоидоз) В структуре исследований паразитологического отдела они занимают 30,8%. Это только наиболее экономически затратные заболевания. Широкое распространение кровепаразитарных болезней крупного рогатого скота в стране связано с распространением переносчиков – большого числа видов клещей, теплым климатом, свободным выпасом животных и отсутствием дератизационных мероприятий. Только выполнение всего комплекса ветеринарно-санитарных мероприятий, рекомендованных нами для фермерских хозяйств в «методических рекомендациях по диагностике, профилактике и лечению кокцидиоза», утвержденных Департаментом ветеринарии Республики Бурунди, позволит значительно сократить ущерб от паразитарных заболеваний.

Список литературы:

1. Заблоцкий В. Т., Белименко В. В. Профилактика кровепаразитарных болезней домашних животных. Веткорм. 2013; (4): 38-41.

2. Aydin U. E., Aslan O. The determination of some coagulation parameters at calves cocciodiosis. Veteriner Hekimler Dernegi Dergisi. 2012; (83): 1-8.

3. Гнамьен Ф. Э., Ватников Ю. А. Энтомологическая диагностика трипаносомоза крупного рогатого скота на севере республики Кот-д Ивуар. Теоретические и прикладные проблемы агропромышленного комплекса. 2015; (1 (22): 33-35.

4. Sonenshine E. D. Range Expansion of Tick Disease Vectors in North America: Implications for Spread of Tick-Borne Disease. International Journal of Environmental Research and Public Health. 2018; 15 (3): 478.

5. Кравченко И. А. Инвазионные болезни крупного и мелкого рогатого скота. 2023: 75 с.

6. Ахмадов Н. А., Георгиу Х., Белименко В. В., Давладов Х. О. Серологические исследования анаплазмоза крупного рогатого скота в Таджикистане. Доклады ТАСХН. 2012; (2): 51-53.

7. Гулюкин М. И., Заблоцкий В. Т., Белименко В. В., Христиановский П. И., Сару-ханян А. Р. Кровепаразитарные болезни домашних животных: атлас. Сельскохозяйственные технологии. 2013: 86 с.

8. Латыпов Д. Г., Волков А. Х., Тимербаева Р. Р., Кириллов Е. Г. Паразитология и инвазионные болезни животных. 2023: 444 с.

9. Галата В. Ф., Ятусевич А. И. Справочник по ветеринарной паразитологии. Информационно-коммуникационный центр Министерства финансов. 2015: 496 с.

10. Marques R., Kruger R. F., Peterson A. T., De Melo L. F., Vicenzi N., Jimenez Garcia D. Climate change implications for the distribution of the babesiosis and anaplasmosis tick vector, Rhipicephalus (Boophilus) microplus. Vet Res. 2020; (51 (1): 1-10.

11. Minani S., Nsengiyumva E., Bigirimana A., Cubahiro A. Prevalence of fascioliasis in slaughtered ruminants at muyinga slaughterhouse, Burundi. Veterinary Sciences: Research & Reviews. 2023; (9): 65-73.

12. Bal M.S. et al. Diagnosis and management of bovine babesiosis outbreaks in cattle in Punjab state. Veterinary World. 2016; (9 (12): 1370-1374.

13. Nkurunziza et al. Prevalence and associated risk factors assessment of fasciolosis in cattle in Imbo region, Burundi. 2023.

14. Aranda F. D. et al. A discrete epidemic model for bovine Babesiosis disease and tick populations. Open Physics. 2017; (15): 360-369.

15. Ndeleje N., Bouyer J., Stachurski F., Grimaud P., Belem A. M. G., Mbaindingatoloum F. M. et al. Treating cattle to protect people? Impact of footbath insecticide treatment on tsetse density in Chad. PLoS One. 2013; (8): 67580.

16. Dantas-Torres M. Climate Change, Biodiversity, Ticks, and Tick-Borne Diseases, the Butterfly Effect. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 2015; (4 (3): 452-461.

17. Bernardo C., Carneiro M., Rauta de Avelar B., Donatele D., Freire I., Pereira M. Prevalence of liver condemnation due to bovine fasciolosis in Southern Espirito Santo. Rev Bras Parasitol Vet. 2011; (20): 49-53.

18. Acevedo N., Caraballo L. IgE cross-reactivity between Ascaris lumbricoides and mite allergens: Possible influences on allergic sensitization and asthma. Parasite Immunol. 2011; (33): 309-321.

19. Бронштейн А. М., Максимова М. С., Федянина Л. В. [и др.]. Кишечные те-ниидозы: современная ситуация, последние достижения и проблемы, алгоритм диагностики и лечения. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2020; (2): 49-55.

Сведения об авторах:

Бучуми Эсперанс, аспирант кафедры терапии и фармакологии ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубили-на»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-996-5350118; e-mail: esperancebucumi78@gmail.com.

Черных Олег Юрьевич, доктор ветеринарных наук, профессор кафедры микробиологии, эпизоотологии и вирусологии ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет им. И. Т. Трубилина; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-918-4956659; e-mail: gukkl50@kubanvet.ru.

Ответственный за переписку с редакцией: Лысенко Александр Анатолиевич, доктор ветеринарных наук, профессор кафедры терапии и фармакологии ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Тру-билина»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-961-5075415; e-mail: vet.kubgau@mail.ru.

Заявленный вклад авторов:

Бучуми Эсперанс: проведение исследования, формальный анализ, визуализация, валидация результатов, написание черновика рукописи.

Лысенко А.А.: разработка концепции, научное руководство, написание рукописи – редактирование.

Черных О.Ю.: курирование данных, написание рукописи – редактирование.

Конфликт интересов: авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов. Все авторы одобрили окончательную версию рукописи.