Динамика параметров крови молодняка крупного рогатого скота при моно- и смешанных инвазиях дикроцелиоза и фасциолеза (морфология и биохимия)

УДК 619:616.995.121.3
DOI 10.33861/2071-8020-2025-6-3-6

Оригинальное эмпирическое исследование

Кабардиев С. Ш., Карпущенко К. А., Шапиев Б. И., Гюльахмедова Н. Х. Прикаспийский зональный научно-исследовательский
ветеринарный институт – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения
«Федеральный аграрный научный центр Республики Дагестан», Республика Дагестан, г. Махачкала

Аннотация. В статье приведены гематологические и биохимические показатели организма молодняка крупного рогатого скота при моно и микстинвазиях дикроцелиоза и фасциолеза. Заражение животных гельминтами негативно сказывается на гематологических показателях. Анализ крови играет важную роль в обнаружении скрытых патологических процессов, постановке дифференциального диагноза, выявлении осложнений, контроле эффективности лечения и прогнозировании течения болезни. Поэтому, актуальным является изучение изменений в показателях крови (таких как количество эритроцитов, лейкоцитов и уровень гемоглобина), в зависимости от развития у животных моно- и микстинвазиями, вызванными Dicrocoelium dendriticum (дикроцелиоз) или Fasciola hepatica (фасцио-лез). Исследования проводили в фермерских хозяйствах Бабаюртовского района, расположенного в равнинной зоне Республики Дагестан. Материалом для исследования служили кровь и фекалии, полученные от молодняка крупного рогатого скота, а также внутренние органы вынужденно забитых животных. С этой целью использовали сертифицированные в ветеринарной паразитологии методы прижизненной диагностики (копроовоскопия, гельминтоскопия, метод нативного мазка, методы Демидова и Фюллеборна), применительно к пробам фекалий. В результате проведенных исследований установлено, что при одновременном заражении молодняка крупного рогатого скота несколькими видами гельминтов (микстинвазии), изменения в составе крови более выражены, чем при заражении только одним видом (моноинвазии). У молодняка крупного рогатого скота, инфицированного фасциолезом и дикроцелиозом (в форме моно- и микстинвазий), наблюдается негативное влияние на гематологический и биохимический профили, проявляющееся в развитии эритропении, гипогемоглобинемии, лейкоцитоза и диспротеинемии. Тяжесть трематодозной инвазии у телят коррелировала с выраженностью изменений в лейкоцитарной формуле. Анализ крови показал сдвиг влево, с увеличением доли незрелых нейтрофилов. Наиболее выраженные изменения наблюдались при смешанной инвазии фасциолезом и дикроцелиозом, что проявлялось в увеличении незрелых нейтрофилов более, чем в восемь раз.

Ключевые слова: крупный рогатый скот, молодняк, моноинвазия, дикроцелиоз, фасциолез, показатель, гематология, биохимия, лей-коформула.

В возникновении инвазионных заболеваний ключевую роль играет взаимодействие между паразитом и хозяином, а также то, насколько хорошо паразит приспособлен к жизни в организме хозяина. Развитие паразитарных болезней определяется тем, как именно паразит воздействует на организм хозяина. Это воздействие может быть разнообразным: от механического повреждения тканей до выделения токсинов, переноса возбудителей других болезней (инокуляторное воздействие) или вызывать аллергические реакции.

Многие исследователи отмечают негативное влияние заражения гельминтами одного вида (моноинвазии) на показатели крови у крупного рогатого скота [1, 2, 3, 4, 5].

Гематологические исследования при паразитарных инвазиях имеют важное диагностическое и прогностическое значение, позволяя выявлять субклинические патологические процессы, дифференцировать диагноз, оценивать тяжесть заболевания и эффективность терапевтических мероприятий. В связи с этим, целью данного исследования является изучение динамики гематологических показателей (количество эритроцитов, лейкоцитов, концентрация гемоглобина) у молодняка крупного рогатого скота при экспериментальном заражении Dicrocoelium dendriticum и Fasciola hepatica [6, 7, 8].

Общеизвестно, что паразиты оказывают негативное влияние на организм, что, в первую очередь, проявляется в изменениях показателей крови. Характер этих изменений зависит от множества факторов, включая вид паразита, степень заражения, общее состояние здоровья организма, условия питания и содержания [2].

Существуют различные мнения ученых о влиянии умеренной трематодозной инвазии на гематологические показатели, что указывает на необходимость дальнейших исследований [1, 3, 5, 7].

Согласно исследованиям [1], острая форма фасциолеза у животных приводит к анемии (снижение эритроцитов на 16-20% и гемоглобина на 18,4-35%) и лейкоцитозу (увеличение лейкоцитов в 2,1-2,2 раза). Лейкоцитарная формула характеризуется увеличением доли базофилов (в 1,5-1,9 раза), палочкоядерных нейтрофилов (в 1,9-4,2) и лимфоцитов (на 6-9%), также снижением доли сегментоядерных нейтрофилов (в 1,6-2,35 раза) и моноцитов (на 25-30%). При хроническом течении заболевания гематологические показатели ухудшаются, в том числе снижается количество лейкоцитов.

По данным других исследователей [5], аналогичные изменения в лейкоцитарной формуле (увеличение базофилов, палочкоядерных нейтрофилов и лимфоцитов, снижение сегментоядерных нейтрофилов и моноцитов) наблюдаются не только при фасциолезе, но и дикроцелиозе.

При дикроцелиозе выраженность изменений в крови максимальна в начале заболевания и постепенно снижается. Исследования [3] показывают, что через 30 дней после заражения наблюдается снижение гемоглобина, эритроцитов и лимфоцитов, а также лейкоцитоз. Фасциолез характеризуется аналогичными изменениями: снижением уровня эритроцитов, гемоглобина, лимфоцитов и некоторых нейтрофилов, увеличением количества лейкоцитов, других нейтрофилов, базофилов, моноцитов и эозинофилов [9, 10, 11, 12].

Существующие исследования [13, 14, 15] преимущественно рассматривали гематологические последствия острых моноинвазий гельминтами. В настоящее время наблюдается дефицит данных, касающихся динамики гематологических показателей при естественном заражении животных несколькими видами гельминтов одновременно.

Настоящее исследование направлено на изучение изменений гематологических параметров у спонтанно зараженного трематодами молодняка, в зависимости от наличия моно- или полиинвазии, с целью расширения знаний в данной области.

Данное исследование направлено на оценку влияния спонтанного заражения молодняка крупного рогатого скота возбудителями дикроцелиоза (Dicrocoelium dendriticum) и фасциолеза (Fasciola hepatica), как в форме моноинвазии, так и при смешанном заражении, на динамику гематологических и биохимических показателей крови.

Цель исследований заключается в изучении динамики параметров крови (морфология, биохимия) молодняка крупного рогатого скота при моно и смешанных инвазиях дикроцелиоза и фасциолеза.

Материалы и методы исследований. Исследования проводили в фермерских хозяйствах Бабаюртовского района, расположенного в равнинной зоне Республики Дагестан. Материалом для исследования служили кровь и фекалии, полученные от молодняка крупного рогатого скота. С этой целью использовали сертифицированные в ветеринарной паразитологии методы прижизненной диагностики (копроовоскопия, гельминтоскопия, метод нативного мазка, методы Демидова и Фюллеборна) применительно к пробам фекалий.

Гематологические и биохимические исследования выполнялись в период с 2024 по 2025 годы в биохимическом отделе Научно-исследовательского института экологической медицины имени С.А. Абусуева, при Дагестанском государственном медицинском университете. В опыте использовали 40 голов бычков красной степной породы, в возрасте от 6 месяцев до года. Животных разделили на 4 группы, три опытных и одна – контрольная, по 10 голов в каждой. Кровь для исследования брали из яремной вены, на 10-й, 30-й и 60-й дни, по утрам, до кормления.

Гематологические и биохимические анализы крови проводились с использованием общепринятых лабораторных методов. В частности, определяли количество эритроцитов и лейкоцитов (подсчет в камере Горяева), уровень гемоглобина (метод Сали), резервную щелочность (тетраметрический метод Неводова), концентрацию кальция (метод Де-Ваарда) и фосфора (метод Бриттса в модификации Усовича). Статистическая обработка данных осуществлялась с помощью вариационной статистики (по Плохинскому, 1969) и программного обеспечения» «Биометрия».

Результаты исследований и их обсуждение. У телят, зараженных только одним видом паразита (либо Dicrocoelium dendriticum, либо Fasciola hepatica), морфологические и биохимические показатели отличались от показателей здоровых (агель-минтозных) животных (табл. 1).

Высокая интенсивность заражения молодняка крупного рогатого скота фасциолезом и дикроцелиозом (как в виде моноинвазии, так и смешанной инвазии) является причиной развития эритропении, гипогемоглобинемии, лейкоцитоза и нарушений белкового обмена, что подтверждается гематологическими и биохимическими исследованиями.

Как видно из таблицы 1, на 10-й день исследования у спонтанно зараженных дикроцелиозом телят первой группы наблюдалось: значительное снижение уровня гемоглобина (58,6±3,6г/л) и эритроцитов (3,9±0,19?1012/л); небольшое увеличение количества лейкоцитов (13,3±0,4?109/л) и частичное снижение общего белка в сыворотке крови (62,7±2,8 г/л), тогда как у животных второй, инвазированных фасциолами, изменения в крови были более выраженными. Отмечалось незначительное снижение уровня гемоглобина (60,3±3,5 г/л), а также снижение уровня эритроцитов (3,6±0,2?1012/л). Количество лейкоцитов увеличилось (14,3±0,5?109/л). Количественные показатели общего белка в сыворотке крови уменьшились (56,9±2,6 г/л).

У животных третьей опытной, инвазированных дикроцелиями и фасциолами, отмечалось снижение гемоглобина (61,2±4,3 г/л) и количества эритроцитов (4,1±0,3?1012/л). Количественные показатели числа лейкоцитов увеличились (61,2±4,3?109/л), показатели общего белка в сыворотке крови уменьшились (63,8±3,2 г/л). У контрольных животных – показатели крови были в пределах физиологической нормы.

Наши исследования выявили, что у животных, зараженных паразитами естественным путем, даже при отсутствии видимых симптомов происходят ощутимые изменения в составе крови.

На 30-ые сутки исследования анализ крови зараженных бычков показал значительное снижение количества эритроцитов, в среднем 4,2±0,3?1012/л, по сравнению с контрольной группой на 2,7±0,1?1012/л. В частности, при заражении фасциолами снижение составило 2,7±0,2?1012/л, дикроцелиями - на 2,3±0,2?1012/л, при смешанном заражении – на 1,5±0,1?1012/л.

Уровень гемоглобина у зараженных животных был значительно ниже нормы на 41,6±0,1 г/л, чем у здоровых из контрольной группы.

Общее количество лейкоцитов у зараженных животных оставалось 1,9±0,4-5, 2±0,3?109/л выше нормы. Однако, при заражении только дикроцелиями или только фасциолами наблюдалось увеличение количества лейкоцитов, соответственно, на 2,9±0,3 – 4,1±0,2?109/л, по сравнению с контрольной группой.

На 60-й день исследования при смешанной инвазии количество лейкоцитов было ниже, чем у здоровых животных. Уровень содержания в сыворотке крови эритроцитов и гемоглобина стабильно держался на низком уровне, в среднем 3,8±0,3?1012/л и 63,0±3,9 г/л.

На протяжении всего исследования отмечались значительные колебания уровня общего белка. К 60-му дню эксперимента у молодняка крупного рогатого скота в опытных группах наблюдалось снижение концентрации общего белка в сыворотке крови в среднем с 75,7±0,8 г/л до 62,5±0,9 г/л, что на 13,2±0,1 г/л ниже, чем в контрольной.

В рамках изучения углеводного обмена оценивался уровень глюкозы, как ключевого показателя промежуточного метаболизма. Результаты анализа крови молодняка, зараженного трематодами (табл. 1), показали существенное повышение уровня глюкозы уже в начале исследования, что свидетельствует о влиянии паразитов. На 10-й день эксперимента концентрация глюкозы в крови опытных животных возросла с 4,02±0,1 ммоль/л до 4,50±0,39 ммоль/л, в то время как в контрольной, уровень глюкозы оставался стабильным (4,03±0,8 – 4,04±0,4 ммоль/л).

Таблица 1 Сравнительные морфо - биохимические показатели крови бычков при моно и смешанных инвазиях дикроцелиоза и фасциолеза на 10-й, 30-й и 60-й сутки, после установления диагноза

Показатели, единицы измерения	Группы животных
	1 опытная	2 опытная	3 опытная	Контроль	Норма
	Дикроцелиоз	Фасциолез	Дикроцелиоз + Фасциолез
1	2	3	4	5	6
На 10-е сутки
Эритроциты,1012/л	3,9±0,19	3,6±0,2	4,1±0,3	5,4±0,2	5,0-7,5
Лейкоциты, 109/л	13,3±0,4	14,3±0,5	15,1±0,9	10,4±0,4	4,5-12,0
Гемоглобин, г/л	58,6±3,6	60,3±3,5	61,2±4,3	112,1±3,6	99-129
Общий белок, г/л	62,7±2,8	56,9±2,6	63,8±3,2	73,8±2,9	61,6-82,2
Альбумины,%	20,8±2,6	23,2±3,3	24,6±2,8	29,9±1,9	27,5-39,4
Глобулины,%	21,9±2,1	25,1±3,6	26,3±2,5	36,4±2,3	28,9-48,6
Глюкоза, ммоль /л	4,50 ± 0,4	4,7±0,6	4,9±1,1	4,03 ± 0,8	3,0-4,2
Щел. резерв, об%СО2	36,3±2,3	34,6±2,4	31,7±2,9	46,6±1,8	46-66
На 30-е сутки
Эритроциты,1012/л	4,1±0,2	3,7±0,2	4,9±0,5	6,4±0,4	5,0-7,5
Лейкоциты, 109/л	13,9±0,4	16,1±0,6	17,2±0,9	10,7±0,4	4,5-12,0
Гемоглобин, г/л	67,3±3,7	64,5±4,5	68,3±5,6	108,3±4,7	99-129
Общий белок, г/л	64,7±2,6	58,5±2,5	66,2±3,2	77,12±2,4	61,6-82,2
Альбумины,%	19,7±2,6	20,9±3,6	21,4±1,9	32,6±2,4	27,5-39,4
Глобулины,%	37,1±3,2	38,5±2,3	39,2±2,8	40,3±3,2	28,9-48,6
Глюкоза, ммоль /л	5,7±0,2	6,2±3,7	6,43±3,9	4,0 ±0,1	3,0-4,2
Щел. резерв,об%СО2	36,7±3,4	40,8±2,8	43,5±3.4	47,8±2,3	46-66
На 60-е сутки
Эритроциты,1012/л	4,0±0,2	3,6±0,2	3,9±0,4	6,9±0,4	5,0-7,5
Лейкоциты, 109/л	15,4±0,4	19,9±0,5	20,1±0,9	10,5±0,7	4,5-12,0
Гемоглобин, г/л	64,7±3,6	61,5±3,7	62,9±4,3	105,6±4,1	99-129
Общий белок, г/л	66,3±2,9	57,8±2,6	63,4±3,1	75,7±0,8	61,6-82,2
Альбумины, г/л	21,1±1,8	20,3±2,2	19,1±2,6	35,3±1,3	27,5-39,4
Глобулины, г/л	39,3±2,3	36,3±3,4	34,3±2,5	38,9±2,7	28,9-48,6
Глюкоза, ммоль /л	4,7 ± 0,2	5,2±2,9	5,6±3,6	4,2 ±0,2	3,0-4,2
Щел. резерв, об СО2	35,6±0,3	33,4±0,7	30,3±0,5	49,6±0,9	46-66

Наибольшее увеличение уровня глюкозы было зафиксировано на 30-й день исследования. В опытной группе этот показатель достиг 5,70 ± 0,20 ммоль/л, что на 1,68 ± 0,10 ммоль/л превышало уровень в контрольной (4,02 ± 0,10 ммоль/л).

Количество щелочной фосфатазы в сыворотке крови у подопытных животных на 10-й день исследования, в среднем– 34,6±2,4 об% СО2, 30-й – 40,8±2,8 об% СО2, и 60-й – 33,4±0,7 об% СО2. В конце эксперимента уровень щелочной фосфатазы, по сравнению с контролем (48,0±1,8 об%СО2), снизился по дням, соответственно на 13,8±1,2; 7,7±0,9; 14,9±1,4 об% СО2.

Наблюдаемое изменение резервной щелочности крови у телят опытных групп является следствием прокисания содержимого рубца, что приводит к нарушению его моторики. Важно отметить, что у контрольной группы животных кислотно-буферные показатели крови оставались в пределах физиологической нормы на протяжении всего периода исследования.

Анализ крови, полученный в ходе исследования на 10-й и 30-й дни, показал, что у телят, зараженных дикроцелиозом, выявлялись значительные изменения в лейкоцитарной формуле.

Установлено увеличение количества эозинофилов (в 2,5 и 1,6 раза), молодых нейтрофилов (в 1,8 и 3,7), палочкоядерных нейтрофилов (в 1,8 и 3,9) и лимфоцитов (на 22% и 15%). Соответственно, отмечено снижение уровня сегментоядерных нейтрофилов (в 2,5 и 2,0), базофилов (в 2,1 и 1,6) и моноцитов (в 2,7 и 2,2). После завершения эксперимента у молодняка крупного рогатого скота, инфицированного патогеном, наблюдался положительный тренд на нормализацию гематологических показателей.

Наиболее значительные изменения в крови при дикроцелио-зе телят крупного рогатого скота наблюдаются в начальной стадии инвазионного процесса. Такая картина обусловлена тем, что молодые трематоды, обитая в печени, провоцируют воспалительные процессы в органах желчевыводящей системы: печени (гепатит), желчных протоках (холангит) и желчном пузыре (холецистит). В хронической стадии, когда паразиты уже обосновались в печени и желчном пузыре, показатели крови нормализуются, по сравнению с острым периодом.

У особей второй группы, инфицированных фасциолами, в ходе наблюдений были выявлены следующие изменения в лейкоцитарном составе крови (в сравнении со здоровыми животными): базофилы увеличились в 1,9 и 1,5 раза, палочкоядерные нейтрофилы – в 1,9 и 4,2. Количество лимфоцитов – на 6 и 9% больше, чем у здоровых животных. В то же время, количество сегментоядерных нейтрофилов снизилось в 1,6 и 2,4 раза, моноцитов – 2,6 и 3,1.

По завершении эксперимента на хронической стадии, когда взрослые фасциолы живут в желчных путях, гематологические параметры зараженных телят значительно ухудшились. У них было зафиксировано снижение общего числа лейкоцитов, хотя этот показатель все еще превышал тот, что наблюдался у здоровых животных.

У животных третьей группы, инвазированных одновременно дикроцелиями и фасциолами, при анализе крови выявлены существенные изменения в лейкоцитарной формуле. Так, наблюдалось значительное увеличение количества эозинофилов (в 2,3-1,7-1,4 раза), юных нейтрофилов (в 1,1-3,0-3,0) и палочкоядерных нейтро- 5 филов (в 2,1-4,2-3,7), по сравнению с показателями контрольной группы. Отмечалось также повышение уровня лимфоцитов (на 16,19,2-8,3%), при этом, количество зрелых сегментоядерных нейтрофилов было значительно понижено (в 2,3- 2,8- 2,3 раза).

Таблица 2 Гематологические показатели (лейкоформула) при моно и смешанных инвазиях дикроцелиоза и фасциолеза у молодняка крупного рогатого скота по дням исследования

Группы, и дни исследования	Нейтрофилы %			Лимфоци­ты, %	Моноци­ты, %	Базо­филы, %	Эози- нофи- лы, %
	Юные	Палочкоядерные	Сегментоядерные
	Дикроцелиоз	Фасциолез	Дикроцелиоз +Фасциолез
1	2	3	4	5	6	7	8
Норма	0-1	2-5	20-30	40-65	2-7	0-2	5-8
1-я опытная
10 день	1,8±0,7	3,6±0,5	12,3±3,4	74,5±2,5	5,7±1,2	0,9±2,2	15,3±1,5
30 день	3,7±0,8	7,8±0,9	15,6±2,2	67,5±2,3	2,1±1,5	0,6±2,3	12,5±1,7
60 день	0,9±1,1	3,2±0,6	22,7±3,1	45,8±3,2	2,6±1,3	1,1±2,2	9,3±2,1
2-я опытная
10 день	1,6±1,3	6,6±1,8	12,5±2,5	71,5±2,3	0,8±1,9	3,8±1,3	16,4±2,3
30 день	2,8±1,5	14,7±1,6	8,3±2,1	74,7±2,5	0,6±2,2	3,0±0,9	12,6±2,1
60 день	08±1,4	5,9±2,1	18,9±2,3	68,7±3,1	1,7±2,3	2,6±1,4	3,3±2,4
3-я опытная
10 день	1,3±1,3	10,5±1,7	8,7±2,1	81,1±2,2	2,0±1,9	2,8±1,3	18,4±1,4
30 день	3,0±1,5	21,0±2,3	7,14±2,2	74,2±2,1	1,8±2,2	2,6±1,5	13,6±1,6
60 день	3,0±2,1	18,5±2,5	8,7±2,2	73,3±2,4	1,8±1,6	2,3±1,7	11,2±1,1
4-я Контроль
10 день	1,1±1,3	4,7±1,5	25,6±2,7	58,6±3,2	6,2±2,7	0,8±1,0	6,7±2,5
30 день	1,2±1,7	4,2±1,7	22,7±2,4	59,3±2,8	6,6±2,3	1,2±1,4	6,2±2,2
60 день	1,0±1,4	4,8±2,1	26,4±2,8	61,3±3,3	6,7±2,5	1,4±1,7	7,2±2,1

Заключение. В результате проведенных исследований установлено, что при одновременном заражении молодняка крупного рогатого скота несколькими видами гельминтов (микстинвазии), изменения в составе крови более выражены, чем при заражении только одним видом (моноинвазии). Наиболее интенсивные изменения гематологических показателей при микстинвазиях наблюдаются в период с 30-го по 60-й дни после заражения, в хронической стадии заболевания они менее заметны. Анализ крови у телят, зараженных трематодами, показал сдвиг лейкоцитарной формулы влево, что выражалось в существенном увеличении доли незрелых нейтрофилов. При фасциолезе количество незрелых нейтрофилов возросло в 2,2 раза, дикроцелиозе – 4,2, при одновременном заражении обоими паразитами – 8,1. У инфицированных животных также отмечалось увеличение уровня палочкоядерных нейтрофилов на 1,8-6,5%. Наблюдаемые изменения в лейкоцитарной формуле, а именно увеличение количества палочкоядерных и юных нейтрофилов при общем лейкоцитозе, свидетельствуют о регенеративном сдвиге влево. Это указывает на активацию гемопоэза в костном мозге и является характерным признаком воспалительного процесса.

Список литературы:

1. Абдуллаев Х. С. Формирование паразитарной системы в организме крупного рогатого скота и меры борьбы с паразитозами в Нечерноземной зоне Российской Федерации: автореф. дис. … д-ра вет. наук. Иваново. 2007: 26-27.

2. Васильев Ю. Г., Трошин Е. И., Любимов А. И. Ветеринарная клиническая гематология. Лань. 2015: 165-218.

3. Волков А. Х. Методы и средства борьбы с ассоциативными инвазионными болезнями крупного рогатого скота: дис... д-ра вет. наук. Казань. 2000: 69-130.

4. Джальчинова В. Б., Чистяков Г. М. Эозинофилы и их роль в патогенезе аллергических заболеваний. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 1999; (5): 42-45.

5. Мкртчян М.Э., Мовсесян С.О. Патогенное воздействие трематод и их ассоциаций на организм хозяина. Российский паразитологический журнал. 2015; (4): 66-71.

6. Мазихова А. М., Беккиева С. А., Юсупов А. О., Чиляев С. Ш. Влияние тремато-дозных инвазий на морфологический состав крови крупного рогатого скота. Вестник КрасГАУ. 2009; (4): 163-164.

7. Петров Ю. Ф., Абдуллаев Х. С., Мухаммедов З. Р. Динамика биохимических показателей при микстинвазии крупного рогатого скота. Уч. Зап. КГАВМ. 2006; (184): 204-210.

8. Чухлебова О. М. Фармакологическая коррекция обменных процессов у крупного рогатого скота при гельминтозах и антигельминтной терапии: автореф. дис. … канд. вет. наук. 2012: 11-15.

9. Bush R. K., Geller M., Busse W. W. Response to corticosteroids in the hypereosinophilic syndrom. Arch. Intern. Med 1978; (138): 1244.

10. Buttervorth A. E., Sturrock R. F. Eosinophils as mediators antibodydependent damage to schistosomula. Nature 1975; (256): 727-729.

11. Prin L., Lefebvre P., Gruart V. Polinucleare eosinophile et recepteur glucocorticoide. Rev. Allergology. 1990; (30): 83-85.

12. Кабардиев С. Ш., Биттиров А. М., Магомедов О. А. [и др.]. Биоэкология и видовая структура ассоциативных инвазий овец в регионе Северного Кавказа. Актуальные вопросы ветеринарной медицины: теоретические и практические аспекты. 2015: 23-27.

13. Кошеваров Н. И. [и др.]. Маритогония Fasciola hepatica и Dicrocoelium lanceatum в организме крупного рогатого скота в Центральной зоне России. Матер.науч. конф. Всеросс. общества гельминтологов РАН. 2004; (5): 429-431.

14. Мазихова А. А., Биттиров А. М. Экологические аспекты смешанных инвазий мо-ниезиоза и стронгилятозов пищеварительного тракта овец в Кабардино-Балкарской Республике. Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. 2009; (10): 472-474.

15. Mkrtchyan M. E. et al. Metabolismo Stato in animali infetti trematodi. Italian Science Review. 2015; (11 (32): 50-52.

Сведения об авторах:

Карпущенко Карине Альбертовна, кандидат ветеринарных наук, ведущий научный сотрудник лаборатории по изучению инвазионных болезней сельскохозяйственных животных и птиц Прикаспийского зонального научно-исследовательского ветеринарного института – филиала ФГБНУ «Федеральный аграрный научный центр Республики Дагестан»; 367000, г. Махачкала, ул. Дахадаева, 88; тел.: 8-903-4235495; e-mail: pznivi@mail.ru.

Шапиев Бамматгерей Исламгереевич, кандидат медицинских наук, заведующий биохимической лабораторией, доцент кафедры общей и биологической химии Прикаспийского зонального научно-исследовательского ветеринарного института – филиала ФГБНУ «Федеральный аграрный научный центр Республики Дагестан»; 367000, г. Махачкала, ул. Дахадаева, 88.

Гюльахмедова Наимат Худкеровна, младший научный сотрудник лаборатории по изучению инвазионных болезней сельскохозяйственных животных и птиц Прикаспийского зонального научно-исследовательского ветеринарного института – филиала ФГБНУ «Федеральный аграрный научный центр Республики Дагестан»; 367000, г. Махачкала, ул. Дахадаева, 88.

Ответственный за переписку с редакцией: Кабардиев Садрутдин Шамши-тович, доктор ветеринарных наук, главный научный сотрудник, заведующий лабораторией по изучению инвазионных болезней сельскохозяйственных животных и птиц Прикаспийского зонального научно-исследовательского ветеринарного института – филиала ФГБНУ «Федеральный аграрный научный центр Республики Дагестан»; 367000, г. Махачкала, ул. Дахадаева, 88; тел.: 8-928-2503032; e-mail: pznivi05@mail.ru.

Заявленный вклад авторов: рукопись была написана благодаря вкладу всех авторов. Все авторы одобрили окончательную версию рукописи.

Конфликт интересов: авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

	Полезные ссылки
Департамент ветеринарии Краснодарского края Ассоциация Практикующих Ветеринарных Врачей