rus eng
Архив номеров / Номер 6, 2012 год Распечатать

Проблема борьбы и профилактики инфекционного ринотрахеита - инфекционного пустулезного вульвовагинита крупного рогатого скота

Мищенко В.А. ФГУ"ВНИИЗЖ" (г. Владимир)
Джаилиди Г.А. Госветуправление Краснодарского края
Черных О.Ю. ГБУ КК "Кропоткинская краевая ветеринарная лаборатория"
Якубенко Е.В. ГБУКСББЖ "Краснодарская"
Шевченко А.А. Кубанский госагроуниверситет

Инфекционный ринотрахеит - инфекционный пустулезный вульвовагинит (ИРТ-ИПВ) крупного рогатого скота - это острая контагиозная и одна из наиболее распространенных экономически значимых инфекционных болезней, проявляющаяся поражением верхних дыхательных путей, пневмониями, вагинитами, эндометритами, энцефалитами, конъюнктивитами, артритами, баланопоститами, абортами и мертворождениями у стельных коров.

Особенность ИРТ крупного рогатого скота заключается в том, что переболевшие животные пожизненно остаются скрытыми вирусоноси-телями [2,3, 4, 5]. Латентное вирусоносительство находится под постоянным иммунным контролем со стороны макроорганизма. При снижении резистентности или возникновении иммунодефицитного состояния происходит реактивация латентного вируса и его выделение во внешнюю среду. Реактивация латентного вируса ИРТ может быть обусловлена различными факторами, приводящими к возникновению иммунодефици-тов, втом числе: стрессы ("травматический", "транспортый","алиментар-ный", "технологический" и стресс при отеле), инфицирование возбудителями парагриппа-3, вирусной диареи, лейкоза, респираторно-синци-тиальной инфекции, коронавирусной дизентерии взрослого крупного рогатого скота, герпесвирусной инфекции 4-го типа; бесконтрольное применение антибиотиков и сульфаниламидов в больших дозах; мико-токсикозы [2, 4, 5, 11, 14].

Экономический ущерб при инфекционном ринотрахеите складывается из:

  • недополучения приплода вследствие абортов и мертворождений (5-30%);
  • рождения нежизнеспособных телят (около 10%);
  • снижения удоя во время болезни (до 50-60%);
  • гибели молодняка от серозной пневмонии (20%);
  • недополучения привесов живой массы у молодняка (50-70%); -увеличения на 30% коров с многократными неоплодотворенными осеменениями;
  • снижения на 5-10% выхода телят на 100 коров. Возбудителем ИРТ-ИПВ является герпесвирус КРС 1 типа, относящийся к семейству Alphaherpesvirinae семейства Herpesviridae.

Все охарактеризованные к настоящему времени штаммы вируса ИРТ-ИПВ представляют один антигенный тип, но могут различаться генетически. При рестрикционном анализе вирусной ДНК два подтипа возбудителя ИРТ: герпесвирус 1.1 и герпесвирус 1.2; кроме этого сущес-твуе герпесвирус 1.3, который был отнесен к самостоятельному герпе-свирусу типа 5 [1, 2, 4].

Герпесвирус 1.1 выделяется при респираторной, а герпесвирус 1.2 - при генитальной и респираторной патологии [2, 29]. На территории России выявлены все три типа герпесвируса [1].

Источником возбудителя являются больные и животные-вирусоносители. Восприимчивые животные заболевают через 10-15 дней после поступления в неблагополучное хозяйство. Возбудитель передается аэрогенным, контактным и половым путем; через инфицированную сперму, корма, воду, транспорт, обслуживающий персонал.

К вирусу ИРТ восприимчивы крупный рогатый скот, козы, олени, антилопы, буйволы, свиньи [4].

Вирус ИРТ обладает тропизмом к органам дыхания и размножения. Попав на слизистые оболочки верхних дыхательных путей или половых органов, вирус внедряется в клетки эпителия, где репродуцируется, вызывая их гибель и слущивание. На поверхности слизистых оболочек верхних дыхательных путей при этом образуются эрозии, а половых органов - узелки и пустулы. Впоследствии вирус попадает в кровь или мигрирует в центральную нервную систему. При заражении КРС вирулентным вирусом все животные становятся латентными носителями возбудителя. Вакцинные (аттенуированные) штаммы также остаются в организме в латентном состоянии [6].

В распространении инфекционного ринотрахеита большую роль играют животные-вирусоносители, выделяющие вирус во внешнюю среду при отсутствии клинических признаков заболевания.

Возбудитель ИРТ проникает через плацентарный барьер с клетками крови. Клиническое проявление болезни во многом зависит от осложнений, обусловленных другими вирусами и бактериями.

Инфицирование вирусом ИРТ плода приводит к виремии, поражению многих органов и тканей, его гибели, и, как следствие - к аборту или мертворождению. Аборты и гибель плода в утробе матери отмечались не ранее, чем через три недели после заражения вирусом. Обычно аборты происходят на 5-8-м месяце стельности [1, 2, 3, 5]. При экспериментальном заражении аборты наблюдаются не ранее 7-35-ти суток [7].

У абортированных плодов обнаруживались сильные аутолитичес-кие поражения во внутренних органах, что обусловлено тем, что гибель плодов наступает в матке за 24-240 часов до аборта [1]. Если телята рождались живыми, приблизительно у 10% из них регистрировали острую катаральную бронхопневмонию с последующей гибелью в течение трех суток [8].

В организме крупного рогатого скота, инокулированного живой вирусвакцинои против ИРТ, происходит репликация вакцинного вируса и выделение его во внешнюю среду в течение 16-90 дней с последующей передачей неиммунным животным [9, 22].

Многие исследователи наблюдали аборты стельных коров через 21-105 дней после применения живых вакцин против ИРТ [2, 5, 7, 22, 23].

Американские исследователи зарегистрировали аборты у 20 коров из 119 иммунизированных живой вирусвакцинои, содержащей ат-тенуированный вирус ИРТ. Вакцинация коров проводилась в середине стельности [7].

Инокуляция вирусвакцины против ИРТ коровам в ранний период стельности может привести к прерыванию беременности [16, 18, 24, 25].

Из внутренних органов абортированных плодов выделяется вирус, а также обнаруживаются характерные для ИРТ КРС патоморфоло-гические изменения.

Количество абортов, вызванных вирусом ИРТ КРС, при которых удалось доказать его этиологическую роль, обычно не превышает 5-11%; у первотелок аборты регистрировались чаще, чем у взрослых коров [8].

Применение живой вирусвакцины против ИРТ коровам во время эстрального цикла может сопровождаться поражением яичников [2, 16].

В основе эффективности живых вакцин лежит имитация субклинических инфекций. После введения живой вакцины у небольшой группы животных развиваются слабовыраженные клинические признаки, напоминающие легкое течение естественной инфекции. У таких животных обнаруживается персистенция и экскреция аттенуированно-го вируса [18].

Вакцинный аттенуированный вирус ИРТ может переходить в латентную фазу.

Установлен факт передачи вакцинного вируса от привитых живой вирусвакцинои животных неимунному скоту, в том числе стельным коровам и нетелям [9, 22].

Вирус ИРТ-ИПВ способен размножаться в моноцитах, нейтрофи-лах, лимфоцитах и макрофагах (преимущественно альвеолярных), вызывая иммуносупрессию, максимальный уровень которой отмечается на 5 день после заражения. У молодняка иммуносупрессия более выражена и продолжается дольше, чем у взрослых особей. Все это обуславливает иммунодефицитное состояние у КРС, повышает его восприимчивость к другим инфекциям и препятствует адекватному иммунному ответу на введение вакцин [3, 4, 10, 12, 23]. Во многих стадах через 48-144 часов после инокуляции живой вирусвакцинои против ИРТ у молодняка проявляются массовые клинические признаки заболевания органов дыхания [2, 3, 5,11, 22].

Ряд исследователей расценивает данный факт как повышенную реактогенность вирусвакцины на фоне пониженной резистентности телят вследствие неудовлетворительных условий содержания и кормления, а также стрессовых ситуаций, возникающих при перегруппировках животных [2, 16]. Поствакцинальные осложнения, проявляющиеся клиническими признаками заболевания органов дыхания, наиболее часто регистрируют у скрытых вирусоносителей [2, 11]. Существенным недостатком живых вирусвакцин против ИРТ является большая вероятность контаминации производственных серий "случайным" вирусом вирусной диареи - болезни слизистых оболочек. Особенно опасной является контаминация вирусом ВД-ВС второго генотипа, что приводило к массовым летальным исходам среди иммунизированных против ИРТ животных [13, 14, 21]. Имеются многочисленные данные о контаминации вирусом диареи крупного рогатого скота сыворотки крови, используемой для культивирования культур клеток [21, 27, 28].

Многие исследователи считают, что одним из основных способов борьбы с ИРТ является вакцинация [2, 5].

Доказано, что если в стаде имеется более 15-20% серопозитив-ных животных, то наиболее реальным способом борьбы с ИРТ является вакцинация. Другие исследователи считают, что существует альтернатива вакцинации при оздоровлении популяции КРС от ИРТ на уровне стад - это изоляция и убой серопозитивных животных с последующим восполнением поголовья серонегативным скотом [27]. Все это свидетельствует о неоднозначной оценке разными исследователями роли вакцинации в системе мер по искоренению ИРТ КРС.

В настоящее время инфекционный ринотрахеит ликвидирован в Австрии, Дании, Швеции, Швейцарии и Норвегии [20].

В перечисленных выше странах меры борьбы и профилактики ИРТ КРС базируются на следующих мероприятиях:

  • обязательной регистрации инфекции;
  • регулярном исследовании сывороток крови и сборного молока на наличие антител к вирусу ИРТ;
  • в случае выявления серопозитивных животных на хозяйство накладываются ограничения, животных отправляют на убой.

В большинстве стран мира в основе мероприятий по борьбе и профилактике ИРТ лежат действия, целью которых является предупреждение заноса возбудителя в хозяйство (стадо), то есть профилактика, либо разрыв эпизоотической цепи, прекращение эпизоотического процесса в неблагополучных хозяйствах (ликвидация вспышек заболевания).

В функциональном плане эти действия направлены на предупреждение заражения животных.

Многочисленные наблюдения свидетельствуют о том, что при наличии в популяции восприимчивых животных большой (75-80%) прослойки иммунных особей эпизоотический процесс прерывается.

Во многих странах мира в системе мер борьбы и профилактики ИРТ вакцинопрофилактика занимает одно из главных мест [2, 23, 27].

Массовая и правильно организованная иммунизация против ИРТ вакциной высокого качества позволяет предупреждать вспышки заболевания.

Для профилактики инфекционного ринотрахеита широко применяются живые и инактивированные вакцины.

У инактивированных вакцин, также как и у живых, есть противники и сторонники.

Живые вакцины против ИРТ отличаются большим разнообразием, обуславливают образование напряженного иммунитета и защиту от клинического проявления болезни. Наряду с генетически закрепленной утратой патогенных свойств и потерей способности вызывать инфекционное заболевание вакцинные штаммы сохраняют способность размножаться в месте введения, а в дальнейшем - в регионарных лимфоузлах и внутренних органах.

Вакцинные вирусные штаммы размножаются в организме привитого животного до тех пор, пока его защитные механизмы не затормозят их развитие [16].

У вакцинированных против ИРТ живыми вирусвакцинами животных иммунитет наступает через 5-7 дней после иммунизации и сохраняется не менее 1 года [2, 3,14,17].

На формирование иммунного ответа после введения вирусвакци-ны отрицательное влияние оказывают колостральные и пассивно приобретенные антитела. Вирусвакцина против ИРТ индуцирует в организме иммунизированных телят сероконверсию при отсутствии или очень низком у них уровне колостральных антител [2]. В связи с этим, первую вакцинацию рекомендуется проводить у телят 2-4-х месячного возраста, то есть в период исчезновения колостральных антител [2, 19, 23, 26].

В последнее время на российском рынке появилась живая маркерная вакцина против ИРТ производства компании "Интервет" (Нидерланды). Вакцина "Бовилюс JBR тагкег" изготовлена из аттенуи-рованного генетически маркированного штамма "GK/Д" вируса ИРТ, культивируемого в культуре клеток почек телят. Указанная вакцина не вызывает выработку антител к гликопротеину Е, содержащегося в эпизоотических штаммах вируса ИРТ. Это позволяет дифференцировать вакцинированных животных от инфицированных. Рекомендуется применять эту вакцину для иммунизации стельных и лактирующих коров, а также быков-производителей. Считается, что указанной вакциной можно иммунизировать животных на любой стадии стельности и, что данный препарат позволяет надежно защищать телят с 14-ти дневного возраста независимо от уровня колостральных антител [15].

Существенным недостатком живых вакцин против ИРТ является то, что используемая в процессе культивирования вируса сыворотка КРС может содержать контаминанты вирусы, микоплазмы [5].

Так, в 7 сериях маркированной вакцины против ИРТ фирмы "Вауег", реализованных в Нидерландах, был обнаружен вирус диареи КРС. При этом 7000 из 45000 фермеров отмечали у привитых этим препаратом животных признаки вирусной диареи [13,14].

На формирование иммунного ответа после введения живой вирусвакцины отрицательное влияние оказывают колостральные и пассивно приобретенные вирусспецифические антитела. Вирусвакцина индуцирует в организме привитых телят сероконверсию при отсутствии или очень низком уровне у них колостральных антител [2].

Этот феномен послужил основанием для рекомендации о целесообразности проводить первую вакцинацию получивших колостральные антитела телят живыми вирусвакцинами против ИРТ в 2-4-х месячном возрасте.

Многие исследователи рекомендуют применять живые вирусвак-цины против ИРТ для иммунизации откормочного крупного рогатого скота в неблагополучных или угрожаемых хозяйствах [14].

В настоящее время на российском рынке реализуется вакцина "Бови-шилд Голд FPL5" компании "Пфайзер Энимал Хелз". В состав указанного препарата входят живые аттенуированные возбудители ПГ-3, ИРТ, ВД, РСВИ, а также инактивированные лептоспиры пяти серо-групп. В инструкции по применению данного препарата указано, что с целью предупреждения поствакцинальных абортов запрещается прививать животных в период стельности, если они не были иммунизированы вакциной "Бови-шилд 1_5" в течение последних 12 месяцев. Телят, родившихся от вакцинированных коров, рекомендуется прививать в возрасте 4 месяцев дважды с интервалом 3-4 недели.

Для специфической профилактики ИРТ в молочном животноводстве большинство исследователей рекомендуют применять инактивированные вакцины [3, 4].

Согласно пункту 3.6 "Инструкции о мероприятиях по профилактике и ликвидации заболевания КРС инфекционным ринотрахеитом - пустулезным вульвовагинитом", утвержденной ГУВ МСХ СССР 26 июля 1971 года, КРС хозяйств молочного направления иммунизируют инактивиро-ванной вакциной.

В случае импорта крупного рогатого скота в неблагополучные по ИРТ хозяйства, согласно статье 2.3.5.5. "Санитарного кодекса наземных животных МЭБ 2006 г.", ввозимых животных рекомендуется иммунизировать инактивированной вакциной.

В ФГУ "ВНИИЗЖ" разработан ряд вакцинных препаратов для профилактики и борьбы с ИРТ КРС. Практическое применение нашли моно-и поливалентные сорбированные вакцины, изготовленные из вируса ИРТ, выращенного в перевиваемых культурах клеток, инактивирован-ного аминоэтилэтиленимином с добавлением адъювантов (гель гидроокиси алюминия и сапонин). Такие вакцины авирулентны, безвредны, стерильны и обладают выраженной антигенностью и иммуногенностью. Через 7-14 дней после иммунизации эти препараты индуцируют выработку иммунитета продолжительностью 6-12 месяцев. При этом, как правило, требуется двукратное введение вакцины с интервалом 10-20 дней с последующей ревакцинацией.

Массовая вакцинопрофилактика позволяет предупредить вспышку заболевания, снизить уровень заболеваемости и купировать эпизоотический процесс. Массовая вакцинация позволяет создать популя-ционный иммунитет и снизить циркуляцию вируса вплоть до элиминации его в иммунной популяции.

Иммунный ответ на вакцину строго специфичен, но активная иммунизация сорбированными вакцинами не обеспечивает развитие одинаковой степени защиты всех животных стада в связи с тем, что на уровень иммунитета существенное влияние оказывает физиологический и иммунологический статус животного [10].

Во многих животноводческих хозяйствах регистрируют особи с иммунодефицитным состоянием, обусловленным рядом причин [11]. В таких хозяйствах сорбированные вакцины не всегда позволяют купировать и ликвидировать вспышки ИРТ, так как не все вакцинированные животные способны адекватно реагировать на введение препарата.

С целью устранения этого недостатка в ФГУ "ВНИИЗЖ" были разработаны и испытаны инактивированные эмульсионные вакцины против ИРТ. В серии сравнительных опытов было установлено, что эмульсионные вакцины, как моновалентные, так и ассоциированные, индуцируют иммунный ответу всех привитых животных, независимо от физиологического и иммунологического состояния их организма.

Известно, что эффективной мерой профилактики и борьбы с инфекционным ринотрахеитом является применение инактивированных вакцин. При этом необходимым условием является создание однородного иммунного фона среди КРС всей популяции (стада, фермы) с целью прекращения репликации и распространения возбудителя [12].

Известно, что уровень гуморальных колостральных антител к вирусу ИРТ у телят не однороден и колеблется от О до 4 log2. У телят из некоторых ферм антитела обнаруживали в 10-20% проб, из других - в 70-100%; в отдельных случаях колостральных антител к вирусу ИРТ не выявлялось.

Сложившаяся в России система профилактики ИРТ и ПГ-3 КРС предусматривает двукратную иммунизацию молодняка 30-40 дневного возраста живой вакциной "Бивак" во время или после перегруппировки. По мнению многих исследователей, вакцинация телят в более раннем возрасте неприемлема по причине нейтрализации вакцинного вируса колостральными антителами [2, 3].

Результаты проведенного нами эпизоотического обследования животноводческих ферм свидетельствуют о том, что клинические признаки болезни проявлялись у телят, как правило, в 35-45-ти дневном возрасте, то есть через 5-15 дней после перегруппировки и вакцинации по традиционной схеме. Известно, что при перегруппировках телята подвержены стрессу, являющемуся причиной иммунодефицитного состояния.

В связи с этим, нами были проведены серии сравнительных опытов, в результате которых было установлено, что уровень колостральных антител к вирусу ИРТ существенно снижается к 30-му дню жизни теленка, а к 47-му - становится ниже диагностического.

Двукратная иммунизация телят эмульсионной инактивированной вакциной против ИРТ обуславливала в возрасте от 2 до 20 дней выработку вирусспецифических антител, несмотря на высокий уровень колостральных антител на момент вакцинации.

Таким образом, предложенный нами способ вакцинации позволяет профилактировать заболевание молодняка КРС инфекционным ринотрахеитом даже на фоне развившегося у них иммунодефицитного состояния.

Наряду с респираторной формой ИРТ, в России распространена и генитальная форма болезни - инфекционный пустулезный вульвовагинит (ИПВ), который приводит к снижению удоев (молочная продуктивность при этом не всегда восстанавливается), истощению, нарушению функции воспроизводства, эндометритам, и, как следствие - бесплодию.

Для ликвидации и профилактики ИПВ разработана схема мероприятий, включающая: изоляцию абортировавших коров, этиотропное и симптоматическое лечение клинически больных животных, двукратную иммунизацию всего поголовья КРС в неблагополучном хозяйстве эмульсионной инактивированной вакциной против ИРТ, проведение дезинфекции помещений и контроль уровня гуморального иммунитета.

Список литературы

  1. Юров К.П., Шуляк А.Ф. Ветеринария,1998,N°11,10-12
  2. Сюрин В.Н. и соавт., Вирусные болезни животных, М.,1998,928с.
  3. Закутский Н.И. и соавт., Герпесвирусные болезни животных// Владимир, "Фолиаш", 2003,282с.
  4. Глотов А.Г. и соавт., Инфекционный ринофахеит КРС //Новосибирск, 2006,196 с.
  5. Штрауб О.Х. Инфекции КРС, вызываемые гернесвирусом.//М.:Ко-лос,1984,43-112
  6. Герпетические инфекции//Патологоанатомическая диагностика болезней КРС. М.: Агропромиздат,1987,158-168.
  7. Дженсен Р., Маккей Д., Инфекционный ринотрахеит //Болезни КРС при промышленном откорме. М.: Колос ,1977,11-17.
  8. Петрова О.Г и соавт.\\Ве1.врач,2005,2,50-53
  9. Матковская С.Г Диагностика инфекционного ринотрахеита- пустулезного вульвовагинита крупною poгaтoгo скотa по показателям антител в носовом, влагалищном ceкpeтax и слезе//Автореф.дис..кандвет.наук.-Харьков,1999-20с.
  10. Мищенко В.А. и соавт.//Ветеринария,2006,11,17-20
  11. Мищенко В.А. и соавт.//Ветеринария,2000,9,5-6
  12. Мищенко В.А. и соавт.//Ветеринария Кубани,2008,2,5-7
  13. Костыркин Ю.Л. и соавт/Труды ФГУ "ВНИИЗЖ",2005,3,171-183
  14. Глотов А.Г. и соавт.//Ветеринария с.-х ж-х ,2006,8,15-24
  15. Олейник А.В.//Практик,2007,1,56-61
  16. Cepгеев В.А. Вирусные вакцины.-Киев.Урожай,1993
  17. Салтыкова В.А. и соавт // Био, 2007, 8, 29 - 31
  18. Cepгeeв ВА и соавт. Вирусы и вирусные вакцины. М.Библионика,2007.-524с.
  19. Салтыкова В.Л. и соатт.//Био,2007,8,29-31
  20. Нуотио Л. и соавт.//РВЖ СХЖ.2007,1,27-31
  21. Barkema Н.М. el al. // Tydschr. Diergeneesskd., 2001,126,158 - 165.
  22. van Drunen el. al.// Immunology and Cell Biology, 1993, 71,405 - 420.
  23. Slraub O.C. Infections bovine rhinoiracheiie virus // Virus infections of Ruminants. - Amsterdam etc.: - Elsever sci: Publ. 1990, ch. 9, 71 - 108.
  24. Millner I.M.et al//Amer. I. vet. Res., 1989, 50.4, 551 - 554
  25. Millner I.M.et а1//Атег. I. vet. Res., 1987, 48.11, 1555 - 1558
  26. Smith P. et al // Лтег. I. Vet. Res., 1990, 51, 7, 969 - 972
  27. Acherman M. Engels M.//Vet. Microbiol., 2006,113, 3 - 4, 293 - 302
  28. Vilcek S. // Acta Virol., 2001, 45, 2, 81 - 86
  29. Manaul of siandaris for Diagnostic Test and Vaccines. 2004

Реферат

Инфекционный ринофахеит - инфекционный нуаулезный вульвоватинит (ИРТ-ИПВ) КРС - это острая контагиозная и одна из наиболее распространенных экономически значимых инфекционных болезней, проявляющаяся поражением верхних дыхательных путей, пневмониями, вагинитами, эндометритами, энцефалитами, коньюнктивитами, артритами, баланопоститами, абортами и мершорождениями стельных коров.

В статье приведены данные о методах и средсшах борьбы и нрофилакжки инфекционною ринотрахеита - инфекционною нуаулезного вульвоватинита КРС.

Ключевые слова: крупный рогатый cкот, вирусоносители, герпесвирус, штаммы, тропизм, opганы дыхания, opганы размножения.

Сведения об авторах

Мищенко Владимир Александрович, главный научный сотрудник лаборатории профилактики болезней свиней и poiaioio скотa ФГБУ "ВНИИЗЖ", докюр ветеринарных наук, профессор; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; телефон: 8 (4922) 26-17-65 20-83; e-mail: mishenko@arriah.ru.

Джаилиди Георгий Анастасович, кандидат биологических наук, руководитель юсударственного управления ветеринарии Краснодарскою края; 350000, г. Краснодар, ул. Рашнилевская, 36, каб. 704; 8 (861) 262-19-23; e-mail: dga@ uv.krasnodar.ru.

Черных Олег Юрьевич, директор ГБУ Краснодарскою края "Кроножинскоая краевая ветеринарная лаборатория", доктор ветеринарных наук; 352380, Краснодарский край, г. Кропоткин, ул. Красноармейская, д 303; телефон: 8 (86138) 6-23-14; e-mail: gukkvl50@kubanvet.ru.

Якубенко Елена Васильевна, начальник ГБУ КСББЖ "Краснодарская", кандидат биоло! ических наук; 350004, Краснодарский край, г. Краснодар, ул. Калинина, 15,1; 1елефон (861)221-59-92; e-mail: vetkuban@mail.ru.

Ответственный за переписку с редакцией: Шевченко Александр Алексеевич, доктор ветеринарных наук, профессор, заведующий кафедры микробиологии, эпизоотологии и вирусологии, ФГБОУ ВПО "Кубанский государственный аграрный университет"; 350044, Краснодар, ул. Калинина, 13; тел. 8 (918) 154-94-61; e-mail: shevhenko_aa@rambler.ru.

UDC 619:616.98:578.825.5:618.6-002.6-084

PROBLEM OF CONTROL AND PREVENTION OF INFECTIOUS BOVINE RHINOTRACHEITIS-INFECTIOUS PUSTULAR VULVOVAGINITIS

Mishchenko V.A., Dzhailidi G.A., Chernykh O.Yu.. Yakubenko E.V, Shevchenko A.A.

Summary

Infectious rhinotracheitis is characterized by lesions of the upper respiratory tract, pneumonia, vaginitis, endometritis, encephalitis, conjunctivitis, arthritis, balanoposthitis, abortion and stillbirth in pregnant cows. Economic damage is made up of: not getting the offspring due to abortion and stillbirth (5-30%), birth of non-viable calves (10%), reducing milk yield (50-60%), death of young animals with pneumonia (20%), receiving less weight gain of live weight (50-70%) and decline of 5-10% of calves per 100 cows.

Three types of herpes virus are identified in Russia. Sick animals and virus carriers are the source of the pathogen, which can be transmitted aerogenic or by contact, through infected semen, feed, water, transport. Cattle, goats, deer, antelope, buffalo, pigs are susceptible to the virus of IRT. Data on the methods and means of control and prevention of infectious bovine rhinotracheitis are presented in the article.

Key words: cattle, virus carriers, herpesvirus, strains, iropism, respiratory and reproductive organs.

References

  1. Yurov K.P., ShulyakA.F. - Veterinariya. - Moscow, 1998 (11). - pp.10-12.
  2. Syurin V.N., Samuylenko A.Ya., Solovev B.V Virusnye bolezni zhivoinykh [Viral animal diseases]. - Moscow, 1998: 928 p.
  3. Zakuisky N.I. Gerpesvirusnye bolezni zhivoinykh [Herpesvirus animal diseases]. - Foliant. - Vladimir, 2003. - 282 p.
  4. Glotov A.G. Infektsionny rinotrakheit KRS [Infectious bovine rhinotracheitis]. - Novosibirsk, 2006: 196 p.
  5. Shtraub O.Kh. Infektsii KRS, vyzyvaemye gerpesvirusom [Herpesvirus bovine infections]. - Kolos. - Moscow, 1984. - pp. 43-112.
  6. Gerpeiicheskie infektsii [Herpesvirus infections]. - Moscow, 1987: 158-168.
  7. Jenson R., McKey D. Infektsionny rinotrakheit [Infectious rhinotracheitis].- Kolos. - Moscow, 1977. - pp. 11-17.
  8. Petrova O.G. - Vetvrach, 2005 (2). - pp. 50-53
  9. Maikovskaya Diagnostika infekisionnogo rinoirakheiia-pusiuleznogo vulvovaginita krupnogo rogatogo skota po pokazaielyam antitel v nosovom, lagalishchnom secrete i sleze [Diagnostics of bovine infectious rhinotracheiiis-pustular vulvovaginitis on indices of antibodies in nasal, vaginal secretions and tear].- Kharkiv, 1999: 20 p.
  10.  Mishchenko V.A. - Veterinariya. - Moscow, 2006 (11). - pp. 17-20.
  11. Mishchenko V.A. - Veterinariya. - Moscow, 2000 (9). - pp. 5-6.
  12. Mishchenko V.A., Kononov A.V, Mishchenko A.V, Dumova V.V., Nikeshina T В., Pavlov D.K. Vliyanie fiziologicheskogo i immunobiologicheskogo statusa krupnogo rogatogo skota na uroven postvaktsinalnogo immuniieia [Influence of physiological and immunobiological status of cattle on the level of postvaccinal immunity]. - Veterinariya Kubani. - Krasnodar, 2008 (2). - pp. 5-7.
  13. Kostyrkin Yu.A. - 2005: 171-183.
  14. Glotov A.G. - Veterinariya. - Moscow, 2006 (8). - pp. 15-24.
  15. OleynikA.V. - Praktik. - 2007 (1). - pp. 56-61.
  16. Sergeev V.A. Virusnye vaktsiny [Viral vaccines]. - Urozhay. - Kiev, 1993.
  17. Saltykova V.A. - Bio. - 2007 (8). - pp. 29-31.
  18. Sergeev V.A. Virusy i virusnye vaktsiny [Viruses and viral vaccines]. -Biblionika. - Moscow, 2007. - 524 p.
  19. Saltykova V.A. - Bio. - 2007. - pp. 29.
  20. Nuotio L. - 2007 (1). - pp. 27-31.
  21. -29. Vide supra.

Author affiliation

Mishchenko Vladimir A., D.Sc. in Veterinary Medicine, professor, chief expert for bovine diseases of Federal State Establishment "Federal Centre of Animal Health* (FSE "АН-Russian Research Institute of Animal Health"); mcrd. Yurjevets, Vladimir, Russia, 600901; phone: 8 (4922) 26-17-65 20-83; e-mail: mishenko@arriah.ru.

Dzhailidi GeorgyA., Ph. D. in Biology, Head of the State Veterinary Department of Krasnodar region; 36, Rashpilevskaya St., Krasnodar, 350000; phone: 8 (861) 262-19-23; e-mail: dga@uv.krasnodar.ru.

Chernykh Oleg Yu., D.Sc. in Veterinary Medicine, director of the Kropotkin territorial veterinary laboratory; 303, Krasnoarmeyskaya St., Kropotkin, 352380; phone: 8 (86138) 6-23-14; e-mail: gukkvl50@kubanvet.ru.

Yakubenko E.V., Ph.D. in Biology, Chief of the Krasnodar Regional Station of fighting against animal diseases; 15/1, Kalinina St., Krasnodar, 350044; 8 (918) 45-42-355; e-mail: vetkuban@mail.ru.

Responsible for correspondence with the editorial board:

Shevchenko Aleksander A., D.Sc. in Veterinary Medicine, professor, head of the department of microbiology, virology and epizootology of the Kuban state agrarian university; 13, Kalinina st, Krasnodar, 350044; 8 (918) 1549461; e-mail: shevchenko_aa@rambler.ru.

 

Полезные ссылки
Департамент ветеринарии Краснодарского края Департамент ветеринарии Краснодарского края Ассоциация Практикующих Ветеринарных Врачей Ассоциация Практикующих Ветеринарных Врачей
2011 © Ветеринария Кубани Разработка сайта - Интернет-Имидж