Особенности кобувирусной инфекции сельскохозяйственных животных

УДК 619.616-053.31:616.3
DOI 10.33861/2071-8020-2021-5-3-6

Мищенко В.А., Мищенко А.В., Яшин Р.В. Федеральное государственное бюджетное учреждение
«Федеральный центр охраны здоровья животных», г. Владимир
Черных О.Ю., Лысенко А.А., Кривонос Р.А. Федеральное государственное бюджетное
образовательное учреждение высшего образования «Кубанский государственный аграрный
университет имени И.Т. Трубилина», г. Краснодар

Экономическая эффективность животноводства обусловлена высокой продуктивностью животных, полноценным кормлением и благополучием по инфекционным, инвазионным и массовым незаразным заболеваниям. В структуре заболеваний телят, ягнят, козлят и поросят в ранний постнатальный период превалирующее место занимают нарушения функции пищеварительной системы, клинически проявляющиеся диареей, обуславливающей развитие выраженной дегидратации, токсемии, нарушениями обмена веществ и иммунодефицитов.

Массовые нарушения функции желудочно-кишечного тракта отличаются значительным полиморфизмом, включающие широкий спектр различных факторов, в том числе физиологических, санитарно-гигиенических и инфекционных, регистрируются у 70-80% новорожденных телят. Ведущей причиной гастроэнтеритов являются инфекционные агенты, в том числе вирусы, бактерии, простейшие и грибы. Гибель больных новорожденных телят, как правило, наступала на 2-5 или 7-10 сутки. Обычно от диареи погибало от 15 до 55% новорожденных телят. Долгое время в фекалиях, отобранных от больных диареей новорожденных телят, выявлялись ротавирусы, коронавирусы, пестивирусы (вирус вирусной диареи). Для профилактики ротавирусной, корона-вирусной и вирусной диареи в Российской Федерации были разработаны инактивированные вакцины [2, 3]. Несмотря на высокую антигенную активность и полевую эффективность указанных вакцин, в ряде крупных животноводческих хозяйств были зарегистрированы вспышки массовой диареи новорожденных телят. Результаты исследований проб фекалий новорожденных телят на наличие ротавирусов, коронавирусов и возбудителя вирусной диареи были отрицательные. В последнее время появились многочисленные сообщения о том, что в пробах фекалий больных диареей телят были обнаружены раннее неизвестные норовирус и кобувирус [5, 6, 7, 14, 16, 24, 37, 44, 45].

В марте 1989 года среди жителей одного населенного пункта в префектуре Аити Японии была зарегистрирована массовая вспышка острого гастроэнтерита. При эпидемиологическом обследовании было установлено, что заболевшие жители употребляли сырые устрицы. Из проб фекалий больных пациентов в культуре клеток почки зеленой мартышки (BS-C-1) был выделен цитопатогенный агент диаметром 30 нм, который получил название вирус Айти (штамм А846/88) [43]. По данным молекулярно-биологических исследований выделенного возбудителя было установлено, что выделенный возбудитель является новым членом семейства Picornaviridae [41, 44]. В одной лаборатории Японии (Nagoya University School of Medicine, Nagoya, Japan) были зарегистрированы случаи цитопатических изменений в монослое культуры клеток Hela, которая в этой лаборатории использовалась более 30 лет. Для изучения причин указанных изменений была проведена биопроба в культуре клеток Vero. Этот агент, названный штаммом U-1, был адаптирован к культуре клеток Vero до получения выраженного ЦПД [45]. По данным электронной микроскопии цитопа-тогенный агент по морфологии не отличался от вируса Айти. Геномная организация выделенного штамма вируса U-1 аналогична структуре пикорнавирусов. Полученные результаты явились основанием для заключения о том, что возбудители, изолированные из монослойной культуры клеток Hela, проб фекалий и сывороток крови относятся к семейству Picornaviridae [45].

При выяснении источника вируса-контаминанта культуры клеток Hela было проведено исследование 72 проб фекалий от клинически здорового крупного рогатого скота. Вирус был обнаружен в 12 (16,7%) пробах фекалий. В 43 (59,7%) сыворотках крови крупного рогатого скота были выявлены вируснейтрализующие антитела к выделенному вирусу. В то же время, при исследовании 192 проб сывороток людей, 242 проб от обезьян, 139 проб от свиней, 5 проб от лошадей, 22 проб от собак и 9 проб от кошек антител к вирусу-контаминанту культуры клеток Hela не выявлено. Полученные результаты свидетельствовали о том, что источником вируса-контаминанта культуры клеток Hela явилась сыворотка крупного рогатого скота. Вирус, выделенный из проб фекалий крупного рогатого скота, генетически отличался от вируса человека [45]. Этот возбудитель был назван кобувирусом - производное от японского слова «кобу» - бугорок, который напоминает форма вириона при электронной микроскопии [45]. Вирионы кобувирусов представляют собой безоболочечные частицы с икосаэдрической симметрией (Т=3), диаметром 27-30 нм. Капсид состоит из 12 кап-сомеров. Молекулярная масса кобувирусов 8-9 мегадальтон. Вирионы имеют коэффициент седиментации 140-165 S. Геном кобувируса представлен линейной однонитевой инфекционной РНК длиной 8,28,3 тысяч нуклеотидных оснований. Кобувирусы стабильны при рН 3,5 и сохраняют инфекционную активность при обработке хлороформом, эфиром и неиногенными моющими средствами. Репликация ко-бувируса и сборка происходят в цитоплазме восприимчивых клеток. Заражение начинается с присоединения вириона к специфическим рецепторам на плазматической мембране, что обеспечивается эндо-цитозом. Вирус выходит из клетки-хозяина путем лизиса и виропори-нов. Культивирование кобувируса свиней проводили в монослойных культурах клеток Vero, PK-15, ВНК-21, MDBK [15, 28].

Согласно биологическим свойствам и результатам филогенетического анализа генома выделенных штаммов вирусов семейство Picornaviridae разделено на 17 родов, в том числе кобувирусы отнесены к роду КоЬиуииэ [1, 40]. Первоначально члены рода Kobuvirus были названы в соответствии с наименованием их видов-хозяев. В настоящее время предложена таксономия кобувирусов, а виды вирусов были переименованы. «Вирус Aichi» был переименован в «Aichivirus A», «кобувирус КРС» был переименован в «Aichivirus B», а «кобувирус свиней» был изменен на «Aichivirus C». Среди Aichivirus A были описаны три отдельных члена, включая вирус Aichi 1 (Aichivirus у человека), кобувирус собак, кобувирус мыши. В пробах фекалий черных коз был обнаружен новый вид кобувируса D [4, 20]. Данные филогенетического анализа генома кобувирусов (Aichivirus) явились основанием для классификации штаммов кобувируса на шесть видов. В таблице 1 приведены сведения о классификации кобувирусов.

В результате детального изучения молекулярно-биологических свойств выделенных штаммов кобувирусов было установлено, что геном возбудителя подвержен мутациям, что приводит к возникновению отличающихся возбудителей. В связи с этим была предложена классификация кобувирусов, которая предусматривает отличающиеся возбудители относить к отдельным «кластерам или геногруппам» [8, 16].

Таблица 1 Классификация кобувирусов

Виды кобувирусов
Aichivirus A	Кобувирус человека
	Кобувирус собаки
	Кобувирус кошки
	Кобувирус мыши
Aichivirus В	Кобувирус КРС
	Кобувирус овец
	Кобувирус хорька
Aichivirus С	Кобувирус свиньи
Aichivirus D	Кобувирус коз
Aichivirus E	Кобувирус кроликов
Aichivirus F	Кобувирус летучих мышей

Эпизоотическими особенностями кобувирусной инфекции являются: высокая контагиозность, длительное выделение возбудителя из организма больных животных и животных-вирусоносителей, реализация различных путей передачи. Клинические признаки и морфологические изменения при кобувирусной инфекции аналогичны поражениям, регистрируемым при ротавирусной и коронавирусной инфекциях. У трупов телят (10-30 суток), павших от кобувирусной инфекции, наиболее выраженные поражения (воспаление слизистой оболочки) были отмечены в проксимальном отделе кишечника (двенадцатиперстной, тощей и подвздошной кишках). При этом происходит атрофия ворсинок, гипертрофия кишечных желез, отмечается снижение ферментативной активности клеток. При такой патологии отмечаются нарушения функции эпителиального барьера кишечника и развитие диареи. В сыворотках крови, отобранной от крупного рогатого скота и свиней из хозяйств неблагополучных по острым желудочно-кишечным заболеваниям, был обнаружен кобувирус [6, 45]. Эти данные свидетельствуют о наличии в патогенезе кобувирусной инфекции стадии виремии.

При исследовании 107 проб фекалий, отобранных в 2008-2010 гг. в Корее от 30-дневных телят, в 34,7% пробах был выявлен кобуви-рус, который по данным филогенетического анализа был отнесен к трем кластерам (G1, G3, G4). Относящийся ко второму кластеру (G2) кобувирус был обнаружен в пробах фекалиях, отобранных в Японии и Тайланде [14]. Результаты филогенетического анализа генома штаммов кобувируса свидетельствуют о генетическом разнообразии штаммов вируса [9, 35]. В Китае кобувирус был выявлен в 34,9% проб фекалий крупного рогатого скота. Выделенные возбудители были на 81,0-83,4% идентичны по нуклеотидной последовательности кобуви-руса U-1 [9]. Египетскими специалистами были проведены исследования проб фекалий телят из двух разных провинций. Из проб фекалий были выделены штаммы кобувирус, которые по данным филогенетического анализа относились к двум группам вируса (китайской и корейской) [26].

Из фекалий козы был выделен кобувирус, который наиболее тесно связан с кобувирусом свиньи. Сходство по аминокислотам составляло 75,9%, а по нуклеотидам - 70,1% [29]. При исследовании 139 ректальных проб от здоровых и больных диареей коз из Италии была обнаружена РНК кобувируса в 5,8% проб. Выявленный вирус был на 95-98% идентичен кобувирусу крупного рогатого скота из Англии и Южной Кореи. Обнаруженный вирус был на 83,0-97,0% идентичен возбудителю, выделенному от черных коз в Южной Корее и европейской косули (Roe Deer) из Италии [25]. При исследовании проб фекалий от европейской косули был обнаружен кобувирус в 6,6% проб. Выявленный вирус был идентичен (91,2-97,4%) кобувирусу крупного рогатого скота. Этот вирус был на 84,2-87,6% идентичен выделенному возбудителю из проб фекалий черных коз в Южной Корее [13]. Кобу-вирус был выявлен в 62,5% проб фекалий, отобранных от клинически здоровых новорожденных ягнят (до 3-недельного возраста) из отары, расположенной рядом с молочной фермой крупного рогатого скота. По результатам филогенетического анализа выявленные возбудители были идентичны (89,97%) кобувирусу крупного рогатого скота [36]. Кобувирус был обнаружен в 24,5% проб фекалий крупного рогатого скота, в 9,4% проб фекалий свиней и в 2% проб фекалий овец из Республики Ирландия [11]. Кобувирус был выявлен в 39,1% проб фекалий 1-7-месячных ягнят из Бразилии [6].

Распространенность кобувируса у поросят до 4-недельного возраста была значительно выше, чем у взрослых свиней [42]. В декабре 2010 года в 10 провинциях Китая были зарегистрированы вспышки массового диарейного заболевания у 80-100% поросят-сосунов. В пробах фекалий был обнаружен кобувирус. Заболевание приводило к гибели 50-90% поросят [10]. Генетический анализ кобувирусов, выделенных из проб фекалий свиней из восточной Африки (Гвинея и Уганда), свидетельствует о том, что эти возбудители разнообразны и имеют идентичность нуклеотидной последовательности в пределах 89,7-99,1% и 88-92,3% с другими известными кобувирусами свиней. Нуклеотидная последовательность кобувирусов свиней из Восточной Африки идентична кобувирусам человека, быка и собак на 69,4-70,7%, 73,1-74,4% и 67,0-70,7% [5]. Результаты филогенетического анализа кобувирусов, выделенных от свиней, крупного рогатого скота и овец из Бразилии и Голландии, свидетельствуют о генетической изменчивости возбудителя. Установлено, что штамм кобувируса, обнаруженный в фекалиях овец, был более тесно связан с кобувиру-сом человека (Айти). Исследователи провели молекулярный и филогенетический анализы, результаты которых свидетельствуют, что кобу-вирусы группируются в соответствии с видами животных-хозяев, но не с географическими регионами происхождения [6]. При изучении этиологии диареи 6-8-месячного молодняка дикого кабана из одного зоопарков Венгрии методом метагеномного анализа с последующим секвенированием генома, был обнаружен кобувирус, который на 89% по нуклеотидам и 94% по аминокислотам был идентичен кобуви-русу свиньи. Кобувирус был обнаружен и в пробах фекалий диких свиней, обитающих в различных регионах Венгрии [33]. При изучении причин массовых желудочно-кишечных заболеваний поросят-сосунов в провинции Ганьсу Китая из проб фекалий и сывороток крови были выделены в культурах клеток ВНК-21, РК-15 и Vero изоляты кобуви-руса. Установлено, что кобувирус свиней является эндемичным для свиноводческих хозяйств и не ограничен географически. По данным филогенетического анализа было установлено, что в свиноводческих хозяйствах Китая циркулировали четыре группы кобувируса с родством 81-86% [15]. Эти данные позволяют предположить, что мутации и события рекомбинации, возможно, способствовали высокому уровню генетического разнообразия кобувирусов свиней и служат движущей силой в его эволюции. Установлено существование стадии вирусемии в патогенезе кобувирусной инфекции свиней [15]. При изучении молекулярной характеристики 31 штамма кобувируса свиней, выделенных из отобранных в разных регионах Китая проб фекалий свиней, было установлено, что исследуемые возбудители относятся к китайской группе 2. Кобувирусы свиней разделены на четыре кластера (ге-ногруппы): тайско-японская, венгерская, китайская 1 и китайская 2 [15]. При исследовании 18 проб фекалий сизоворонки обыкновенной (Coracias garrulus), обитающей на территории Венгрии, в 3% проб был обнаружен кобувирус [30].

Данные исследований свидетельствуют, что обнаруженный кобу-вирус (SZAL6-KoV/2011/HUN), имеет общего предка с другими возбудителями, что говорит о более раннем происхождении этого вируса. Считается, что основным механизмом передачи кобувируса является фекально-оральный путь через инфицированные корма и воду [20, 37]. Большую угрозу для людей и животных могут представлять живые вирус-вакцины, контаминированные кобувирусом, так как при культивировании вакцинных вирусов может быть использована сыворотка крови инфицированного крупного рогатого скота [45]. Межвидовая передача кобувирусов представляет угрозу широкого распространения патогена [20]. Изучение известных кобувирусов у разных животных и обнаружение новых кобувирусов у потенциальных видов-хозяев помогает выяснить эволюционную связь и зоонозный потенциал кобу-вирусов [20, 30, 38]. Свидетельством зоонозной инфекции является межвидовая передача свиньям кобувируса крупного рогатого скота и наоборот [19].

Данные исследований, проведенных во многих стран мира, свидетельствуют, что кобувирусная инфекция наиболее широко распространена в свиноводческих хозяйствах (3,9-100,0%) [10, 17, 19, 20, 38, 46]. В пробах фекалий коз, косуль и ягнят кобувирус был выявлен в 5,8-62,5% проб [6, 11, 24, 36]. В фекалиях крупного рогатого скота возбудитель был обнаружен в 4,8-79,2% проб [6, 9, 11, 17, 18, 20, 22, 29, 36, 39]. Вероятно, уровень инфицированности обусловлен условиями содержания животных и стадиями патологического процесса. Кобувирус был обнаружен и в пробах фекалий, отобранных от клинически здоровых животных из неблагополучных хозяйств (местностей) [31, 32]. Вероятно пробы фекалий были отобраны от животных в инкубационном периоде или животных-реконвалесцентов.

Кобувирусная инфекция широко распространена во многих странах мира. Данные о распространении кобувируса в разных странах мира приведены в таблице 2.

Таблица 2 Распространение кобувирусной инфекции в мире

Континенты	Неблагополучные страны по кобувирусу
Европа	Англия, Австрия, Бельгия, Венгрия, Германия, Испания, Италия, Нидерланды, Словакия, Чехия, Швеция, Хорватия, Республика Ирландия
Азия	Япония, Таиланд, Китай, Южная Корея, Вьетнам, Турция, Бангладеш
Южная Америка	Бразилия, Венесуэла
Северная Америка	США
Африка	Египет, Тунис, Гвинея, Уганда

Представленные в таблице 2 данные свидетельствуют о том, что кобувирус был выявлен в странах Европы (13), Азии (7), Северной Америки (1), Южной Америки (2) и Африки (4) [12, 21, 23, 27].

Заключение. Приведенные данные литературы свидетельствуют, что с конца ХХ и начала XXI века зарегистрированы случаи кобувирусной инфекции, проявляющейся массовыми желудочнокишечными заболеваниями людей, а также молодняка животных: крупного рогатого скота, овец, коз, косуль, свиней (домашних и диких), кроликов, собак, лисиц, летучих мышей, хорьков и птиц (сизоворонка обыкновенная). В пробах фекалий и сыворотках крови, отобранных от больных животных, был обнаружен кобувирус. Наибольший ущерб кобувирусная инфекция наносит свиноводству и скотоводству во всем мире. Результаты филогенетического анализа генома штаммов кобувируса свидетельствуют о генетическом разнообразии штаммов вируса. Данные филогенетического анализа генома кобувирусов (Aichivirus) явились основанием для классификации штаммов кобувируса на шесть видов [33, 34]. Межвидовая передача кобувирусов представляет угрозу широкого распространения патогена. Основным путем передачи кобувируса является фекально-оральный путь, через инфицированные корма и воду. Большая вероятность и зоонозного пути заражения. Свидетельством зоонозной инфекции является межвидовая передача свиньям кобувируса крупного рогатого скота и наоборот. Считается, что мутации и рекомбинации способствовали высокому уровню генетического разнообразия кобувирусов и служат движущей силой в его эволюции. Приведенные данные свидетельствуют о необходимости проведения всесторонних исследований кобувирусной инфекции, которые будут полезны для дальнейшего понимания патогенности, генетической гетерогенности, межвидовой передачи и глобального распространения кобувирусов.

Список литературы:

1. Руководство по вирусологии: Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. Под ред. Академика РАН Д.К. Львова. OOO «Издательство «Медицинское информационное агентство». 2013. 232-248.
2. Самуйленко А.Я., Непоклонов Е.А., Воронин Е.С. Инфекционная патология животных. ИКЦ «Академкнига». 2006. Т. 1.
3. Экологические особенности заболеваний пищеварительной системы новорожденных телят/ В.А. Мищенко, Д.К. Павлов, В.В. Думова [и др.]// Ветеринарная патология. 2005. 3. 34-38.
4. Adams M., King A., Carstens E. Raification vote on taxomic proposals to the international committee on taxonomy of viruses// Arch. Virol., 2013, 158, 2023-2030.
5. Amino J., Okoth E., Junga J. [et al.] Molecular detection and genetic characterization of kobuviruses and astroviruses in asymptomatic logal pigs in East Africa//Arch.Virol., 2013, 159, 6, 1313-1319.
6. Barry A.F., Ribeiro J., Alfieri A.F.[ et al.] First detection of kobuvirus in farm animals in Brazil and the Netherlands//Infect Cenet. Evol., 2011, 11, 18111814.
7. Bmic D., Jemersic L., Keros T. et al. The first detection of bovine konavirus in cattle in Croatia//IX Interbational congress of vet. virology, Madrid, 2012, 151152.
8. Candido M., Batinda M., Alencar A. [et al.] Molecular characterization and genetic diversity of bovine Kobuvirus, Brazil//Virus genes, 2017, 53, 105-110.
9. Chang J., Wang Q., Wang F. [et al]. Prevalence and genetic diversity of bovine kobuvirus in China//Arch. Virol., 2014, 159,6,1505-1510.
10. Chen L., Zhu L, Zhou V. [et al.] Molecular and phylogenetic analysis of the porcine kobuvirus VP1 region using infected pigs from Sichuan province, Chine// Virol. J., 2013, 158, 281-282.
11. Collins P., McClinton J., Mc Memamy M. et al. Molecular detection of kobuviruses in livestock in Northe Ireland and the Republik of Ireland//Arch. Virol., 2017, 162(5),1275-1279.
12. Di Martino B., Di Profio F., Di Felice E.[et al]. Molecular detection of bovine kobuvirus in Italy//Arch. Virol., 2012, 157, 2393-2396.
13. Di Martino B., Di Profio F., Melegani I. [et al] Molecular detection of kobuviruses in European roe deer (Capreolus capreolus) in Italy//Archiv. Virology, 2015, 160, 8, 2083-2086.
14. Gomez D., Weece J. Viral enteritis in calves //Can. Vet. J., 2017, 58, 12, 1267-1274.
15. Fan S., Vegiu V., Sun H. et al. Identification and characterization of porcine kobuvirus variat isolated from suckling piglet in Gansu province, China//Viruses, 2013, 5(10), 2548-2560
16. Jeoung H., Lim J.A., Jeoung W. et al. Theree clusters of bovine kobuvirus isolates in Korea, 2008-2010//Virus Genes, 2011,42, 402-406.
17. Kramrin P., Maneekam N.,Hidaka S. et al. Molecular detection of kobuvirus seguences in stool samples collected from healthy pigs in Japan// Infect Cenet. Evol., 2010, 10, 950-954.
18. Kramrin P., Maneekarn N.,Peerakome S. et al. Bovine koburuses from cattle with diarrhea// Emerg. Infect. Diseases, 2008,14,6, 985-986.
19. Kramrin P., Maneekarn N., Kongkaew Z. et al. Porcine kobuvirus in piglets, Thailand// Emerg. Infect. Diseases, 2009, 15, 2075-2076.
20. Kramrin P., Maneekam N., Okitsu S. Epidemiology of human and animal kobuviruses//Virus disease, 2014, 25(2), 195-200.
21. Lee S., Kim H., Choi E. et al Causative agents and epidemiology of diarrhea in Korean native calves//J.Vet.Sci., 2019, 20, 6,1267-1274.
22. Lee M.H., Jeoung H.Y., Lim J.A. et al. Kobuvirus in South Korean black goats//Virus Genes, 2012, 45, 186-189.
23. Li H., Tang C., Yue H. Molecular detection and genomic characteristic of bovine kobuvirus from dairy calves in China//Infect. Genet. Evol., 2019, 74, 10.
24. Mauroy A., Scipion A, Mathijs E. et al. Molecular detection of kobuviruses and recombinant noroviruses in cattle in continental Europe//Arch. Virol., 2009, 154, 1841-1845.
25. Melegari I., Di Profio F., Sarchese V. et al. First molecular evidence of kobuviruses in goat Italy//Arch. Virol., 2016, 161, 11, 3245-3248.
26. Mohamed F., Mansour S., Orabi A.[et al.] Detection and genetic characterization of bovine kobuvirus from calves in Egypt//Arch. Virol.,2018,163, 1439-1447.
27. Moreira А., Raabis S., Craham M. et al/ Identification by next-generation sequencing of Aichivirus B in a calf with enterocolitis and neurologic signs: a cautionary tale //J. Vet. Diagn.Invest.,2017,29, 208-211.
28. Otomaru K., Nao Y., Hago K. et al. Detection of novel kobu-like viruses in Japanse black cattle in Japan//J. Vet. Med. Sci., 2016, 78(20), 321-324.
29. Oem J. et al. Novel kobuviruses species identified from black goat with diarrhea//Vet. Microbiol., 2014, 172,563-567.
30. Pankovics P., Boros A., Kiss T, et al. Identification and complete genome analysis of kobuvirus in fecal samples of European roller (Caracias garrolus) for the first time in a bird//Arch.Virol,2015,160,345-350.
31. Park S., Kim H., Song D. et al. Molecular detection and genetic characterization of kobuviruses in fecal samples collected from diarrheic cattle in Korea//Infect. Genet. Evol., 2011, 11, 1178-1182.
32. Pham N., Kramrin P., Nguyen T. et al. Isolated and molecular characterization of Aichi viruses from fecal specimens collected in Japan, Bangladesh, Thailand and Vietnam//J. Clin. Microbiol., 2007,45, 2287-2288.
33. Reuter G., Nemes C., Boros A. et al. Porcine kobuvirus in wild boars (sus scrofa)//Arch.Virol., 2013,158,281-282.
34. Reuter G., Boros A., Pankovice P. Kobuviruses -a comprehend sue revive//Rev. Med.Virol., 2011, 21(1), 32-41.
35. Reuter G, Boldizsar A, Kiss I. [et al.] Candidate new species of kobuvirus in porcine hosts. //Emerg Infect Dis. 2008; 12: 1968-1970.
36. Reuter G, Boros A , Pankovics P, Egyed L. Kobuvirus in domestic sheep, Hungary// Emerg Infect Dis. 2010; 5:869-870.
37. Reuter G., Egyed L. Bovine kobuvirus in Europe// Emerg. Infect. Diseases, 2009, 15, 5, 822-823.
38. Reuter G, Kecskemeti S, Pankovics P: Evolution of porcine kobuvirus infection. Hungary//. Emerg Infect Dis 2010, 16: 696-698
39. Ribeiro J., Lorenzetti E., Alfieri A. et al. Kobuvirus (Aichivirus B) infection in Brazilian cattle herds//Vet. Res. Commun., 2014, 38,177-182.
40. Stanway G., Hovi T., Knowles N. et al. Molecular and biological basis of picornavirus taxonomy.// Molecular biology of Picornaviruses, 2002, 17-24.
41. Wang L., Frederickson R., Duncan M. [et al.] Bovine kobuvirus in calves with diarrhea, United States// Emerg. Infect. Diseases, 2020, 26, 1, 176-178.
42. Verma H, Mor SK, Abdel-Glil MY [et al.] Identification and molecular characterization of porcine kobuvirus in US swine// Virus genes 2013, 46: 551553.
43. Yamashita T., Kabayashi S. Sakaek K. [et al.] Isolation of cytopathic small round viruses with BS-C-1 cells from patients with gastroenteritis//J. Infect. Dis., 1991, 164, 954-957..
44. Yamashita T., Sakae K., Tsuzuki M. et al. Complete nucleotide seguence and genetic organization of Aichi virus, a disting member of the picornaviridae associated with acute gastroenteritis in human//J.Virol.,1998, 72, 8408-8412.
45. Yamashita T., Ito M., Kabashima Y. [et al.] Isolation and characterization of а new species of kobuvirus association with cattle//J. Gen.Virol, 2003, 84, 3069-3077.
46. Yu J, Jin M, Zhang Q, Li H. [et al.] Candidate porcine kobuvirus, China// Emerg Infect Dis 2009, 15: 823-825.

Резюме. В работе приведены сведения о кобувирусе, вызывающем вспышки заболеваний человека и животных, о клинических признаках заболевания и ареале распространения. Данные литературы свидетельствуют, что с конца XX и начала XXI века зарегистрированы случаи кобувирусной инфекции, проявляющейся массовыми желудочно-кишечными заболеваниями людей, а также молодняка животных: крупного рогатого скота, овец, коз, косуль, свиней (домашних и диких), кроликов, собак, лисиц, летучих мышей, хорьков и птиц (сизоворонка обыкновенная). В пробах фекалий и сыворотках крови, отобранных от больных животных, был обнаружен кобувирус. Наибольший ущерб кобувирусная инфекция наносит свиноводству и скотоводству во всем мире. Результаты филогенетического анализа генома штаммов кобувируса свидетельствуют о генетическом разнообразии штаммов вируса. Данные филогенетического анализа генома кобувирусов (Aichivirus) явились основанием для классификации штаммов кобувируса на шесть видов. Межвидовая передача кобувирусов представляет угрозу широкого распространения патогена. Основным путем передачи кобувируса является фекально-оральный путь, через инфицированные корма и воду. Большая вероятность и зоонозного пути заражения. Свидетельством зоонозной инфекции является межвидовая передача свиньям кобувируса крупного рогатого скота и наоборот. Считается, что мутации и рекомбинации способствовали высокому уровню генетического разнообразия кобувирусов и служат движущей силой в его эволюции. Приведенные данные свидетельствуют о необходимости проведения всесторонних исследований кобувирусной инфекции, которые будут полезны для дальнейшего понимания патогенности, генетической гетерогенности, межвидовой передачи и глобального распространения кобувирусов.

Ключевые слова: кобувирус, пикорнавирусы, культура клеток, контами-нант культуры клеток, человек, крупный рогатый скот, овцы, козы, свиньи, собаки, кошки, вирусемия.

Сведения об авторах:

Мищенко Владимир Александрович, доктор ветеринарных наук, профессор, главный научный сотрудник лаборатории профилактики болезней свиней и рогатого скота ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: mishenko@arriah.ru.

Мищенко Алексей Владимирович, кандидат ветеринарных наук, старший научный сотрудник информационно-аналитического центра ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: a.mischenko@mcx.ru.

Яшин Роман Владимирович, кандидат биологических наук, заведующий лабораторией профилактики болезней свиней и рогатого скота ФГБУ «ВНИИЗЖ»; 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец; тел.: 8-4922-261551; e-mail: yashin@arriah.ru.

Лысенко Александр Анатолиевич, доктор ветеринарных наук, профессор, профессор кафедры терапии и фармакологии ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-961-5075415; e-mail: vetkubgau@mail.ru.

Кривонос Роман Анатольевич, кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры паразитологии, ветсанэкспертизы и зоогигиены ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; e-mail: uv@krasnodar.ru.

Ответственный за переписку с редакцией: Черных Олег Юрьевич, доктор ветеринарных наук, доцент, профессор кафедры микробиологии, эпизоотологии и вирусологии ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-918-4956659; e-mail: gukkvl50@kubanvet.ru.

	Полезные ссылки
Департамент ветеринарии Краснодарского края Ассоциация Практикующих Ветеринарных Врачей