rus eng
Архив номеров / Номер 5, 2012 год Распечатать

Эффективный препарат против ооцист кокцидий - кенококс

Сафиуллин Р. Т., Мурзаков P.P. ГНУ ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина
Ташбулатов А.А. Компания "РАБОС Интернешнл"

Введение. Из анализа современного состояния птицеводства видно, что у нас в стране еще велика доля птицеводческих хозяйств, использующих напольное содержание птиц, где эймериоз регистрируется довольно часто и при большой экстенсивности инвазии. При этом, следует помнить, что даже на современных птицефабриках, где основная масса птиц выращивается в клетках, технология предусматривает содержание родительского стада на полу, что также приводит к заражению эймериями.

Основным источником инвазии являются больная эймериозом и переболевшая птица. В неблагополучных хозяйствах передача инвазии происходит путем прямого и непрямого контакта с больной птицей. Заражение происходит через загрязненные ооцистами эймерий кормушку, корма, воду, подстилку, ящики, инвентарь. Механическими разносчиками ооцист эймерий могут быть синантропные птицы, грызуны, насекомые - мухи, тараканы, а также обслуживающий персонал - на обуви, одежде, предметах ухода. К факторам, способствующим широкому распространению эймериоза, следует отнести различные нарушения технологии выращивания цыплят: скученность птицы в помещениях, повышенная влажность воздуха и подстилки, неполноценное кормление, контакт между цыплятами и птицей старших возрастных групп, антисанитария и другие. Ооцисты эймерий кур во внешней среде, в зависимости от условий, могут сохраняться жизнеспособными и вызывать заражение в течение многих месяцев. В зонах с прохладным дождливым летом и холодными зимами ооцисты могут сохранять жизнеспособность больше года. [1-5]

Снижение продуктивных качеств цыплят, вследствие эймериоза, продолжает ставить перед исследователями задачи совершенствования мер борьбы с инвазией, чем и объясняется внимание, которое уделяют данной проблеме отечественные и зарубежные ученые.

Установлено, что предотвратить экономические потери от эймериоза молодняка кур можно лишь в том случае, если проводить комплекс лечебно- профилактических мероприятий против эндо- и экзогенных стадий возбудителя и при умелом использовании профилактических обработок с применением современных высокоэффективных кокцидиостати-ков и вакцин [6-9].

Однако, к сожалению, часто вакцинация и кокцидиостатики не полностью подавляют развитие эймерий, заболевание приобретает скрытый характер - без видимых проявлений. Резистентность и продуктивность такой птицы заметно снижается и гибель молодняка может наступить от любого другого заболевания.

Справедливости ради, следует сказать, что до последнего времени мероприятия при эймериозах кур состояли из назначения препаратов, действующих на эндогенные стадии кокцидий, а из средств дезинвазии использовали 7%-ный раствор аммиака, 2%-ную эмульсию ортохлорфе-нола, 4%^ный раствор фенола, Ю'Хгный раствор однохлористого йода, 4%-ный раствор едкого натра, которые должны иметь температуру не ниже 80°С [10]. Однако, эффективность отмеченных средств дезинвазии оставляет желает лучшего. Исходя из отмеченного, перед собой поставили цель - испытать эффективность препарата Кенококс, в условиях производства против ооцист кокцидий птиц, по сравнению с базовым препаратом фенолом.

Материалы и методы. Испытание эффективности Кенококса проведено в условиях неблагополучного по кокцидиозу птицеводческого хозяйства Московской области в феврале-марте 2010 года. В птичнике N°34 после сдачи цыплят-бройлеров на убой, последующей уборки и очистки помещения, согласно принятой технологии производства, проводили первоначальную оценку контаминации ооцистами кокцидий. Исходную загрязненность птичника ооцистами кокцидий устанавливали путем исследования 30 соскобов с разных участков пола и 20 соскобов с поверхности стен на уровне до 1 метра флотационным методом.

Для лучшей очистки помещения птичника в хозяйстве использовали щелочное пенное чистящее средство биогель 1,5%-ный при норме расхода 0,4 л на кв. м. Влажную пенную дезинфекцию в птичнике проводили дезинфектантом вироцидом 0,5%-ным при норме расхода 0,4 л на кв. м. и экспозиции 2 часа. По истечении отмеченного времени проводили повторный отбор 20 соскобов с разных участков пола птичника и исследовали для установления остаточного количества ооцист кокцидий. Эффективность Кенококса против ооцист кокцидий птиц определяли опытным путем с искусственной закладкой ооцист. Для этого в птичнике до посадки цыплят выбирали два огороженных участка пола по 1 кв. метру, на которые предварительно наносили 10 тыс. экз. спорули-рованных ооцист Eimeria tenella с помощью опрыскивателя равномерно по всей поверхности. По истечении 30 минут после нанесения культуры ооцист первый участок обрабатывали опрыскиванием 4%-ного раствора Кенококса из расчета 0,5 л на 1 кв. м. при экспозиции 2 часа. Второй опытный участок обрабатывали 4%-ным раствором фенола при такой же норме и экспозиции (базовый препарат). Через 2 часа после нанесения дезинфектантов из каждого участка по отдельности с помощью кисточки и буфера WSH брали смывы и помещали в емкости с завинчивающейся крышкой. В условиях лаборатории ВИГИС взятые из опытных участков смывы с дезинфектантами выливали в пластиковую бутылку с завинчивающейся крышкой (1500 мл). Емкость полоскали несколько раз и сливали в пластиковую бутылку и объем доводили до 1500 мл. Для лучшего смешивания бутылку три раза переворачивали и отстаивали в течение 24 часов при комнатной температуре (22°С). Затем содержимое аспи-рировали с помощью большого шприца до отметки 20 мл, осадок переливали в новую емкость, объем доводили до 50 мл с использованием буфера WSH, хранили в холодильнике при +4 °С. Перед искусственным заражением цыплят материал концентрировали путем центрифугирования, оставляя 10 мл жидкости с ооцистами, подсчитывали их количество в 1 мл. Оценку действия Кенококса и базового препарата фенола на ооцисты кокцидий в условиях птичника определяли биопробой на 30 цыплятах 14-дневного возраста. Цыплят подвергали индивидуальному взвешиванию, нумерации, разделили на три аналогичные группы по 10 в каждой и содержали в птичнике в клетках изолированно.

По условиям опыта ограничений в кормлении цыплят не было, их кормили сухим гранулированным комбикорм без кокцидиостатиков для бройлеров 1-35-дневного возраста по зоотехническим нормам, который условно назывался: стартовый, ростовый и финишный. Потребление воды было без ограничений. За время производственного испытания кормление и условия содержания цыплят всех групп были одинаковые. Температура воздуха в птичнике, где находились группы, была 25,2° С, влажность воздуха 60±5%.

Цыплятам первой группы задавали по 1 мл суспензии ооцист эймерий, обработанной на опытной площадке N°1 4%-ным раствором препарата Кенококс внутрь орально при помощи микропипетки постепенно. Цыплятам второй группы назначали по 1 мл суспензии ооцист эймерий, обработанной на опытной площадке N°2 раствором фенола 4°/гного внутрь. Цыплятам третьей контрольной группы задавали внутрь по 1 мл исходной культуры спорулированных ооцист Eimeria tenella, которая содержала 2000 ооцист/мл.

За время опыта цыплята всех трех групп находились в аналогичных условиях содержания и имели одинаковый рацион. В течение всего периода опыта за цыплятами вели ежедневные клинические наблюдения за общим состоянием, приемом корма и воды, видимыми физиологическими изменениями и другими.

Наличие ооцист в фекалиях опытных цыплят определяли путем ежедневного с 6 по 12-е сутки после назначения сбора всего помета каждой группы в отдельности, которые взвешивали, добавляли воду до объема 2000г, смешивали смесителем в течение 5 минут. Пробы для дальнейших исследований отбирали из каждой группы в количестве 25г., консервировали 4'Хгным раствором бихромата калия и доводили до однородной массы путем размешивания миксером в емкости с завинчивающейся крышкой и хранили в холодильнике при +40С.

Готовый материал исследовали флотационным методом, а количество ооцист в помете подсчитывали с использованием камеры Мак Мастера.

Эффективность Кенококса 4%-ного для дезинвазии объектов внешней среды в производственном опыте, а также 4%-ной концентрации базового препарата фенола определяли исходя из процента снижения выделения ооцист эймерий после воздействия на них этими препаратами по сравнению с цыплятами контрольной группы, получившими по 2000 ооцист/мл.

Результаты исследований. Результаты наших исследований проб и соскобов из объектов внешней среды показали наличие инва- 21 зионных элементов. Так, при исследовании 30 проб и соскобов с разных участков пола птичника в птицеводческом хозяйстве Московской области эймерий Eimeria spp. выделены в 16, что составляет 53,3%. С поверхности стен данного птичника на высоте до 1 метра из разных мест были взяты и обследованы 20 проб, ооцисты эймерий при этом были выделены в 5 (16,7%).

В связи с тем, что опорные балки в этом птичнике не подвергались чистке, было решено взять и обследовать из разных мест 10 соскобов пыли и других имеющихся осадков. Исследования на наличие ооцист эймерий показали отрицательные результаты, и они дают основание предположить, что зимой (пробы брали в феврале), когда в птичнике нет мух, ооцисты эймерий на такой высоте как балки быть не могут.

Из имеющегося в птичнике технологического оборудования: трубы кормораздатчика, водопровод, газовая труба, вентиляция также брали соскобы осевшей пыли, других осадков по 10 из каждого вида оборудования и обследовали в условиях лаборатории ВИГИС. Результаты проведенных исследований на наличие ооцист эймерий были отрицательные.

Представлял определенный интерес обсемененность оставшегося в птичнике после сдачи цыплят корма и воды в поилках. Для выяснения данного вопроса было взято и обследовано на наличие ооцист 5 проб корма и 10 проб воды из отмеченного птичника. Результаты проведенных исследований показали отсутствие ооцист эймерий в обследованных образцах.

Несмотря на удовлетворительное санитарное состояние кормушек было решено подвергать их обследованию. При исследовании 10 соскобов и смывов из кормушек ооцисты эймерий выделены в одной, что составляет 10%.

Проведенные исследования соскобов и смывов из объектов внешней среды показали, что наиболее загрязненными ооцистами эймерий были соскобы с пола птичника (53,3%), стен (16,7%) и заметно меньше кормушек (10%>). Технологическое оборудование данного птичника по результатам выборочных исследований не имело загрязненности ооцистами эймерий.

Ветеринарная служба отмеченного птицеводческого хозяйства по договоренности со специалистами фирмы "СID LINES" для очистки помещения птичника использовали биогель 1,5%-ный, а влажную пенную дезинфекцию проводили вироцидом 0,5%-ным при экспозиции 2 часа.

Для установления остаточного количества ооцист кокцидий после очистки биогелем и дезинфекции вироцидом нами проведен повторный отбор 20 соскобов с разных участков пола птичника и их исследовали отмеченным ранее методом. Результаты исследований показали, что при обследовании 10 проб из одной половины птичника ооцисты эймерий выделены в четырех случаях, а из другой половины в двух случаях из 10, что в среднем по птичнику составляет 6 из 20 обследованных или 30%.

Результаты проведенных исследований показали значительную загрязненность объектов внешней среды птичника при напольном содержании ооцистами эймерий, что свидетельствует о том, что они служат факторами передачи инвазии от зараженной птицы к восприимчивому молодняку. Одновременно это сигнал для ветслужбы птицеводческого хозяйства, указывающий на необходимость своевременной уборки и тщательной дезинвазии для уничтожения имеющихся ооцист эймерий с использованием высокоэффективных и доступных средств.

В производственном испытании эффективность Кенококса 4%-ного против ооцист кокцидий птиц устанавливали опытным путем с искусственной закладкой ооцист на контрольные площадки по сравнению с базовым препаратом фенолом 4%-ным при экспозиции 2 часа. В силу особенности строения ооцист кокцидий, которые покрыты плотной защитной оболочкой и, в отличие от микроорганизмов и яиц гельминтов, практически невозможно по внешнему виду и путем окраски определить насколько успешно, в смысле губительно, действовал препарат для дезинвазии. На этот главный вопрос может ответить только биопроба на цыплятах, которую проводили в птичнике. Общее поголовье цыплят-бройлеров кросс КОББ - 34 тыс. На 10-й день после посадки цыплят проводили выборочный отбор 20 проб помета и их исследовали на наличие ооцист. По результатам исследований все пробы помета были свободны от ооцист эймерий.

На 14-й день после посадки для биопробы по оценке действия Кенококса и базового препарата фенола на ооцисты кокцидий в условиях птичника были отобраны 30 цыплят, которых подвергали индивидуальному взвешиванию, нумерации, разделили на три группы по 10 в каждой и содержали в клетках изолированно по группам.

Цыплята первой группы, которым задавали суспензию ооцист эймерий, обработанной на опытной площадке 4%-ным раствором Кенококса имели на 14-й день среднюю массу тела 398,2 г. Живая масса цыплят второй группы, получавшей суспензию ооцист, обработанной базовым препаратом фенолом равнялась 365 г. Живая масса цыплят группы зараженного контроля на день начала опыта в среднем составила 369, 2 г.

Наблюдения за общим состоянием опытных цыплят после назначения суспензии ооцист эймерий, обработанной 4%-ным раствором Кенококса и фенола, а также чистой культурой спорулированных ооцист проводили по данным ежедневных клинических наблюдений. На основании этих наблюдений в течение 36 часов после назначения у цыплят было угнетенное состояние, они оставались малоактивными, забивались в кучу, что скорее всего было вызвано стрессом, обусловленным отловом, взвешиванием и заражением путем дачи ооцист эймерий. Следует отметить, что осложнений при назначении суспензии с ооцистами и после него не было отмечено. С конца второго дня после назначения суспензии ооцист, обработанной Кенококсом, фенолом и чистой культурой спорулированных ооцист цыплята разных групп не отличались друг от друга.

Второе индивидуальное взвешивание опытных и контрольных цыплят проводили через 12 суток после назначения суспензии ооцист. Данные взвешиваний показали, что цыплята 1-й группы, получавшие суспензию ооцист, обработанной Кенококсом, имели средний прирост к исходной массе тела 807,8 г, что составляет 302,9% (Р<0,05). Цыплята второй группы, получавшие суспензию ооцист, обработанную фенолом, имели средний прирост к исходной массе тела 702 гили 292,3% (Р>0,05). Тогда как цыплята 3-й контрольной группы, получавшие чистую культуру спорулированных ооцист, имели средний прирост к исходной массе тела 691,6 г, что составляет 287,3%>. Результаты проведенных взвешиваний дают нам основание предположить, что у цыплят 1-й группы, получавших суспензию ооцист, обработанную Кенококсом, было наименьшее отрицательное влияние эймериоза на прирост массы тела по сравнению с контрольной группой. Так, прирост массы тела у цыплят первой группы за 12 суток опыта был на 116,2 г или 15,6% больше по сравнению с зараженным контролем (Р<0,05). Безусловно, у цыплят зараженного контроля эймериозная инвазия протекала интенсивно и оказала свое влияние на основной продуктивный показатель молодняка - прирост массы тела. Хотя основным и прямым показателем наличия инвазионного процесса у цыплят были данные наших исследований по определению количества выделяющихся с пометом ооцист и они подтвердили наши предположения. За время производственного испытания Кенококса падежа от кокцидиоза в опытных группах цыплят не отмечено.

При исследовании собранных с 6 по 12-е сутки после дачи ооцист помета из разных групп цыплят были выделены ооцисты, но их количество заметно отличалось. Так, при исследовании цыплят 1-й группы, которым назначали суспензию ооцист, обработанную 4%>-ным раствором Кенококса, ооцист эймерий в помете находили во все сроки исследований в количестве от 1 до 5 экз., а среднее количество в одной камере за все исследования составило 3,2 экз. Количество ооцист в 1 г исследуемого помета составило 640 экз., что в проценте от зараженного контроля -2,37 (табл. 1, 2). Далее определяем интесэффективность Кенококса в 4%-ной концентрации или процент снижения ооцист после воздействия на них ппепапатом по следующей формуле:

ИЭ - интенсэффективность препарата, %
КОк - количество ооцист у цыплят контрольной группы,
КОд - количество ооцист у цыплят, получавших обработанные дезинфектантом ооцисты.

Используя полученные нами данные, определяем интенсэффективность Кенококса

При исследовании проб помета от цыплят 2-й группы, которым давали суспензию ооцист, обработанную 4%гным раствором фенола (базовый препарат) ооцист в камере находили во все сроки исследований (с 1-го по 7-й день) в количестве от 14 до 73 в камере и средний показатель в одной камере за период исследований составил 48,4. Количество ооцист в 1 г исследуемого помета от цыплят второй группы составило 9680 экз. или в проценте от за раженного контроля 35,96. Отсюда определяем интенсэффективность фенола в 4%гной концентрации или процент снижения количества ооцист после воздействия на них препаратом:

Цыплята 3-й группы, которым задавали по 2000 спорулированных ооцист/мл во все сроки исследования с пометом выделяли ооцисты эймерий в количестве от 86 до 342, а средний показатель в 1-й камере за период исследований составил 134,6 экз. Количество ооцист в 1г помета по данной группе зараженного контроля составило 26920 и этот показатель нами использовался как исходный при расчете снижения количества ооцист или интенсэффективности использованных в производственном испытании

Полученные результаты показали, что Кенококс 4%-ный в испытанной дозе 0,5 л на 1 кв. м., экспозиция 2 часа в условиях производства оказался высокоэффективным средством для дезинвазии против ооцист кокцидий птиц, интенсэффективность составила 97,62±1,64%о. Тогда как эффективность базового препарата фенола 4%гного равнялась 64,04±5,65%.

Заключение. В производственных условиях птицеводческого хозяйства Московской области Кенококс 4%-ный в испытанной дозе и экспозиции против ооцист кокцидий птиц показал 97,62%>-ную интенсэффективность, а эффективность базового препарата фенола составила 64,04%.

Список литературы

  1. Акбаев М.Ш. и др. Паразиюлогия и инвазионные болезни животных. - М., 1998. 743с.
  2. Вершинин И.И. Кокцидиозы животных и их дифференциальная диагностика. - Екатеринбург, 1996. -264с.
  3. Колабский Н.А., Пашкин П.И. Кокцидиозы сельскохозяйственных животных.-Л, 1974.-159с.
  4. Крылов М.В. Определитель паразитических простейших. — СП, Зоологический институт РАН, 1996. -693с.
  5. Макаров В.В., Сухарев О.И., Коломыцев А.А. Ветеринарная эпидемиология pacпpocтраненных инфекций: состояние и тенденции // Ветеринарная патология. 2009. N°1. С. 15-20.
  6. Методические рекомендации по оценке антгельминтиков в ветеринарии. -М., 1986.-46с.
  7. Методические рекомендации по борьбе с эймериозами и изоспорозами животных. - М., 1994., РЛСХН. - 30с.
  8. Машковский М.Д. Лекарственные средства. - М., 1993. -685с.
  9. Сафиуллин Р.Т., Забашта А.П. Эффективность и экономичность монлара, кокцисана и элонкограна при эймериозе цыплят // Труды ВИГИС. — М., 2002. - Т. 38. - С. 30-35.
  10. Сафиуллин Р.Т., Нифонтова Т.А. Кокцидиозы пушных зверей // Ветеринария. - М., 2009. -N°3. - С. 30-35.
  11. Черепанов А.А. Методические рекомендации по испытанию средств дезинвазии в ветеринарии. - М., 1999. -16с.

Реферат

Даже на современных птицефабриках, где основная масса птиц выращивается в клетках, технология предусматривает содержание родиюльского стада на полу, что приводит к заражению эймериями.

В неблагополучных хозяйствах передача инвазии происходит путем прямого и непрямого контакта с больной птицей. Снижение продуктивных качеств цыплят вследствие эймериоза продолжает ставить перед исследователями задачи совершенствования мер борьбы с инвазией.

Кроме применения вакцин и кокцидиостатиков, следует уделять внимание и уничтожению ооцист кокцидий во внешней среде. Институтом гельминтологии им. Скрябина был проведен опыт по установлению эффективности для этих целей препарата Кенококс.

В производственных условиях птицеводческого хозяйства Московской области новый препарат Кенококс 4%-ный в дозе 0,5 л/м2 при экспозиции два часа показал против ооцист кокцидий птиц 97,62%-ную итенсэффективность, а эффективность базового препарата фенола соаавила 64,04%.

Ключевые слова: птицеводство, птицы, инвазия, котаминация ооцистами, кокцидиоз, цыплята-бройлеры, дезинвазия, уничтожение кокцидий, Кенококс, фенол, испытания, интесэффективность.

Сведения об авторах

Ринат Туктарович Сафиуллин, д.в.н., профессор, заведующий проблемной лабораторией, ПНУ Всероссийский научно исследовательский институт гельминтологии им.К.И.Скрябина, 1ел. 8 (499) 124-86-66

Руслан Рафисович Мурзаков, аспират, ГНУ Всероссийский научно исследоваюльский институт гельминтологии им.К.И.Скрябина, тел. 8 (499) 124-86-66

Лндрей Ллександрович Ташбулатов, к.в.н., ветеринарный врач, компания "РАБОС Интернешнл", г. Москва, с/п Внуковское, д. Ликова, вл. 85; тел. (495) 785-71-21, факс (495) 785-71-25.

Ответственный за переписку с редакцией: Акимова Алина Александровна, "Рабос Интернешнл"; г. Москва, с/п Внуковское, д. Ликова, вл, 85; тел. (495) 785-71-21, факс (495) 785-71-25, Сайт www.RABOS.ru  

U DC 619:616.993.192.1

KENOCOX - EFFECTIVE PREPARATION AGAINST COCCIDIA OOCYSTS

Saflullln R.T., Murzakov R.R., Tashbulatov A.A.

Summary

The quantity of the poultry farms in the Russian Federation, using the floor housing of birds, where coccidiosis is registered quite often and at big extensiveness of an invasion is great. The main source of the invasion are the diseased and recovered birds.

It is established what it is possible to prevent economic losses from coccidiosis of rearing in only case to carry out only a complex of medical and preventive actions against endogenic and exogenic stages of the activator.

To prevent the backset of infection it is necessary to make poultry houses treatment for the destruction an coccidia oocysts in environment. For this purpose efficiency of the product Kenocox was tested.

The investigation showed a new preparation Kenocox 4% at a dose of 0.5 liters per square meter during exposure 2:00 against coccidia oocysts intensity 97.62%, the base product phenol secured 64.04% effectiveness.

Key words: poultry farming, birds, invasion, contamination of oocysts, coccidiosis, chickens, broilers, disinvasion, coccidias destruction, Kenocox, phenol tests intensefficiency.

References

  1. Аkbaev M.Sh. Paraziiologiya i invazionnye bolezni zhivoinykh [Parasitology and invasive animal diseases]. - Moscow, 1998: 743 p.
  2. Vershinin I.I. Kokisidiozy zhivoinykh i ikh differentsialnaya diagnostika [Coccidioses of animals and differential diagnostics]. - Ekaterinburg, 1996:264 p.
  3. Kolabsky N.A., Pashkin P.I. Kokisidiozy selskohozyaystvennykh zhivoinykh [Coccidiosis of farm animals]. - Leningrad, 1974:159 p.
  4. Krylov M.V. Opredelitel paraziticheskikh prosteyshikh [Determinant of parasilic protozoa]. - Saint-Petersburg, 1996: 693 p.
  5. MakarovV.V., SukharevO.I., KolomytsevA.A. Veterinarnaya epidemiologiya rasprostranennykh infektsiy: sostoyanie i tendentsii [Veterinary epidemiology of common infections: current status and trends]. - Veterinarnaya patologiya. - 2009 (1). - pp.15-20.
  6. Metodicheskie rekomendaisii po otsenke antgel'mintikov v veterinarii [Methodic recommendations on evaluation of veterinary anthelmintics]. - Moscow, 1986: 46 p.
  7. Metodicheskie rekomendaisii po borbe s eymeriozami i izosporozami zhivotnykh [Methodic recommendations against eimerioses and isosporiases of animals]. - Moscow, 1994:30 p.
  8. Mashkovsky M.D. Lekarstvennye sredstva. - Moscow, 1993:685 p.
  9. Safiullin R.T., Zabashta А.Р. Effektivnost i ekonomichnost monlara, koktsisana i elonkograna pri eymerioze tsyplyat [Monlar, Cocisan, Elonkograne efficiency and economy at eimeriose of chickens]. - Moscow, 2002: pp. 30-35.
  10. Safiullin R.T., Nifontova Т.А. Koktsidiozy pushnykh zverey [Coccidioses of fur animals]. - Veterinariya. - Moscow, 2009. - pp. 30-35.
  11. Cherepanov А.А. Metodicheskie rekomendaisii po ispytaniyu sredslv dezinvazii v veterinarii [Methodic recommendations on testing of disinfestation in veterinary medicine]. - Moscow, 1999:16 p.

Author affiliation

Safiullin Rinat Т., D.Sc. in Veterinary Medicine, professor, Research Laboratory Manager of the ЛИ-Russian Skryabin Research Institute of Helminthology; phone: 8 (499) 124-86-66.

Murzakov Ruslan R., postgraduatestudent of the All-Russian Skryabin Research Institute of Helminthology; phone: 8 (499) 124-86-66.

Tashbulatov Andrey A., Ph.D. in Veterinary Medicine, veterinary surgeon of the RABOS Int.; 85, Tsentralnaya St., Likova vllg, Lenin district, Moscow; ph.: 8 (495) 785-71-21; fax: (495) 785-71-25.

Responsible for correspondence with the editorial board:

Akimova Alina A„ RABOS Int.; 85, Tsentralnaya st, Likova vllg, Lenin district, Moscow; ph.: 8 (495) 785 7121.

 

   
2011 © Ветеринария Кубани Разработка сайта - Интернет-Имидж