Проблемы антибиотикотерапии энтеротоксигенного эшерихиоза телят и поросят и пути их решения

УДК: 619:616.98:577:636.2
DOI 10.33861/2071-8020-2022-3-8-11

Тищенко А.С., Кощаев А.Г., Яковенко П.П., Волостнова А.А. Федеральное государственное
бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Кубанский государственный аграрный
университет имени И.Т. Трубилина», г. Краснодар
Терехов В.И. Государственное бюджетное профессиональное образовательное учреждение
Краснодарского края «Пашковский сельскохозяйственный колледж», г. Краснодар

Наиболее ярким представителем условно-патогенной микрофлоры желудочно-кишечного тракта является кишечная палочка. Escherichia coli (E. coli) повсеместно распространенный вид факультативных анаэробов желудочно-кишечного тракта человека и животных. Встречаются безвредные штаммы, которые при нормальном функционировании организма животного участвуют в процессе пищеварения и синтезе витаминов. Однако, некоторые представители вызывают ряд дисбактериозов кишечника, возникающих в результате снижения защитных сил иммунитета [6, 10].

Антибиотикотерапия в настоящее время является одним из наиболее распространенных методов лечения бактериальных кишечных инфекций. Препараты на основе антибиотиков также используются в профилактических целях и для стимуляции роста высокопродуктивных сельскохозяйственных животных [1, 3].

Многие данные свидетельствуют о том, что нерациональный выбор противомикробных препаратов и злоупотребление ими могут привести к резистентности различных бактерий, что в свою очередь причиняет значительный экономический ущерб. Антибиотикорезис-тентность формируется посредством мутаций генома бактерий и селекции наиболее удачных вариантов. В конечном итоге это приводит к осложнению терапии заболеваний и повышает риск распространения, тяжелого течения и летального исхода болезней. Повсеместная генерализация антибиотико-резистентных штаммов бактерий является острейшей проблемой и требует постоянного мониторинга лекарственной устойчивости со стороны ветеринарных специалистов [7, 9].

Лечение инфекции E. coli осложняется появлением резистентности к большинству противомикробных препаратов. С каждым годом все больше увеличивается резистентность представителей семейства энтеробактерий к антибиотикам классов цефалоспоринов, пенициллинов, тетрациклинов, аминогликозидов [4, 9].

Немаловажен и тот факт, что в патогенезе эшерихиозных диарей ведущую роль играют экзотоксины бактерии, именно они обуславливают специфическую гамму поражений. У кишечной палочки выявлена способность продуцировать ряд токсинов, среди которых наиболее изученными являются термолабильный (LT), термостабильный (ST), шигаподобные (STX 1 и 2), некротизирующий (CNF) токсины и гемолизин (Hly). При этом установлено, что экзотоксины являются важнейшими факторами, определяющими вирулентные свойства E. coli и тяжесть течения болезни. Кроме того, экзотоксины участвуют в адгезии и инвазии клетки, вызывают воспалительные реакции и апоптоз клеток. Наиболее распространенной причиной диареи у молодняка животных является энтеротоксигенные варианты кишечной палочки. В связи с этим для лечения и профилактики энтеротоксигенного эше-рихиоза целесообразно применять биопрепараты на основе обезвреженных форм токсинов E. coli [6].

В настоящее время есть исследования по использованию биопрепаратов, которые включают сразу три вида токсинов патогенных эшерихий: LT, ST, и шигаподобные (STX 1 и 2). В тоже время было установлено, что указанные токсины после инактивации стимулируют клеточные и гуморальные звенья иммунитета в первые сутки после введения препаратов на непродолжительное время. В этом случае решение данной проблемы заключается в конструировании вакцинных препаратов на основе инактивированных токсинов кишечной палочки с применением адъювантов - веществ, усиливающих иммунный ответ, в частности бактериальных липополисахаридов и различных химических полимеров, способны повысить иммуногенность растворимых антигенов, которыми являются инактивированные токсины E. coli [5]. В свою очередь, актуальность приобретает применение адъювантных комплексов в сочетании с токсоидными препаратами кишечной палочки, что позволит получить эффективный в иммуногенном отношении биопрепарат для профилактики энтеротоксигенного эшерихиоза.

Целью данного исследования является определение эффективности антибиотикотерапии и альтернативных способов лечения и профилактики энтеротоксигенной эшерихиозной инфекции у телят и поросят.

Материалы и методы исследований. Исследования проводились в условиях лаборатории микробиологии на базе Кубанского госагро-университета и в хозяйствах Краснодарского края, неблагополучных по эшерихиозу.

Патологический материал отбирали у больных телят и поросят с клиническими признаками нарушения работы желудочно-кишечного тракта. Диагноз на заболевание устанавливали с использованием клинических, эпизоотологических и лабораторных методов (бактериологические и серологические тесты). Серотипирование выделенных штаммов кишечной палочки определяли в реакции агглютинации. Морфологические и культуральные свойства изолятов, выделенных из биоматериала, определяли по общепринятым микробиологическим методам серийных разведений с последующим посевом на дифференциально-диагностические питательные среды с последующим инкубированием в термостате при температуре 37°С в течение 19-24 ч. Биохимические и культуральные признаки колоний для подтверждения идентификации возбудителя изучали путем посева на поверхности питательной среды Эндо. Результаты посевов на среде Эндо оценивали визуально по характеру образовавшихся колоний: красных или темно-красных с металлическим блеском. Для изучения морфологических свойств из типичных колоний готовили мазки и окрашивали их по Граму.

Уровень антибиотикорезистентности изучали к 9 антибиотикам, ранее применяемых в хозяйствах, классов цефалоспоринов (цефтазидим, цефуроксим), макролидов (азитромицин), пенициллинов (оксациллин, амоксиклав), аминогликозидов (гентамицин), фторхинолонов (ципрофлоксацин, пефлоксацин), тетрациклинов (тетрациклин) с различным механизмом действия и широте применения в ветеринарной практике.

Для определения чувствительности бактерий к антибиотикам применяли дискодиффузионный метод в агаре с использованием стандартных индикаторных дисков. Реакция основана на диффузии из дисков (носителей АБП) в плотную питательную среду.

Опыт начинали с приготовления питательных сред, затем для изготовления инокулята использовали суточную культуру E. coli, выращенную на среде МПА. Использовали метод прямого суспендирования, для этого профломбированной бактериологической петлей переносили несколько однородных колоний в стерильный изотонический раствор (NaCl 0,9 %). Во время инокуляции суспензию равномерно распределяли по поверхности агара стеклянным шпателем. Диски раскладывали по чашке Петри на равноудаленном расстоянии, не более 5 дисков на чашку. Посевы инкубировали в термостате при температуре 37°С в течение 24 ч. Учет результатов реакции проводили по МУК 4.2.1890-04 Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам [2].

Препараты, содержащие инактивированные экзотоксины кишечной палочки (анатоксины) получали путем культивирования эпизоотических штаммов E. coli, обладающих генами термолабильного, термостабильного и шигаподобного токсинов. Для этого использовали тест-системы «АмплиСенс E. coli-tox». Отобранные штаммы культивировали при 37°С в течение 6-7 суток. Инактивацию культур проводили в течение 14 суток при температуре 37°С с ежедневным двукратным перемешиванием. После завершения инактивации равные объемы культур объединяли, получив, таким образом, комплексный препарат, содержащий 3 вида антигенов. С помощью стерилизующей фильтрации отделили микробную массу от среды культивирования, получая, таким образом, бесклеточную культуральную среду Escherichia coli (эшерихиозный антигенный токсоидный компонент). На конечном этапе отбирали и смешивали бактериальные культуры в равных соотношениях, и добавляли адъюванты (адъювантный комплекс), в качестве которых использовали препарат пирогенал, содержащий 100 мг/мл действующего вещества и 3% раствор полиакриловой кислоты.

Профилактическую эффективность анатоксина проводили в неблагополучных по энтеротоксингенному эшерихиозу скотоводческих и свиноводческих хозяйствах.

Было сформировано 3 группы стельных коров по 25 голов в каждой. Первую группу коров (опытная № 1) иммунизировали анатоксином с адъювантным комплексом 1-й раз за 30 дней до отёла в дозе 5 см3, 2-й раз за 15 дней до отёла в дозе 10 см3. Полученных от этих коров телят, так-же иммунизировали анатоксином с адъювантным комплексом первоначально в возрасте 15-20 дней в дозе 1 см3, а повторно - через 10-15 дней в дозе 2 см3. Вакцину вводили подкожно в область верхней трети шеи. Вторую группу коров и полученных от них телят (опытная № 2) иммунизировали анатоксином с пирогена-лом по схеме и в дозах аналогичных в первой группе. Третью группу коров и полученных от них телят (опытная № 3) иммунизировали анатоксином с полиакриловой кислотой по схеме и в дозах аналогичных в первой группе. Четвертую группу коров и полученных от них телят иммунизировали анатоксином без адъювантов (группа положительного контроля) по схеме и в дозах аналогичных в первой группе. Пятая группа коров была отрицательным контролем, они и полученные от них телята не иммунизировались, а их подвергали антибиотикотера-пии по общепринятым в хозяйстве схемам. Эффективность вакцин оценивали по достижении телятами 3-месячного возраста и перевода их другой корпус на групповое содержание. Критериями оценки служили показатели заболеваемости и летальности.

В свиноводческом хозяйстве, длительно неблагополучном по эше-рихиозу поросят, сформировали 5 групп супоросных свиноматок по 5 животных в каждой. В первой группе свиноматок и полученных от них поросят иммунизировали анатоксином с адъювантным комплексом (опытная № 1). Свиноматок иммунизировали первый раз за 30 дней до опороса в дозе 5 см3, второй раз - за 20 дней в дозе 5 см3 внутримышечно в область основания ушной раковины. Поросят иммунизировали дважды первый раз в возрасте 15-17 дней в дозе 0,25 см3, а второй в возрасте 28-30 дней в дозе 0,5 дней внутримышечно в области внутренней поверхности бедра. Вторую группу свиноматок и полученных от них поросят (опытная № 2) иммунизировали анатоксином с пирогеналом по схеме и в дозах аналогичных в первой группе. Третью группу свиноматок и полученных от них поросят (опытная № 3) иммунизировали анатоксином с полиакриловой кислотой по схеме и в дозах аналогичных в первой группе. Четвертую группу свиноматок и полученных от них поросят иммунизировали анатоксином без адъювантов (группа положительного контроля) по схеме и в дозах аналогичных в первой группе. Пятая группа свиноматок была отрицательным контролем, они и полученные от них поросята не иммунизировались, а подвергались антибиотикотерапии по общепринятым в хозяйстве схемам. За поросятами в течение 90 дней вели клиническое наблюдение, учитывали количество заболевших и павших животных.

Результаты исследований и их обсуждение. После выявления клинического проявления предполагаемой коли-инфекции (залеживание, отказ от корма, повышение температуры тела до 40-40,5°С, со стороны желудочно-кишечного тракта профузный понос, фекалии желтоватого цвета с примесью крови и усиление перистальтики кишечника, со стороны сердечно-сосудистой системы наблюдался слабый учащенный пульс) у телят и поросят были отобраны пробы фекалий для проведения бактериологического исследования.

При культивировании на МПА выросли небольшие колонии грязнобелого цвета, гладкие, S-образные. В изготовленных из культур эшери-хий мазках наблюдали палочки малого размера, слегка закругленные на концах. По Граму окрасились отрицательно. На селективно-дифференциальной среде Эндо колонии приобрели малиново-красную окраску с металлическим отблеском за счет процесса лактозофермента-ции и закисления среды.

После проведения идентификации выделенной чистой культуры с помощью серологических тестов установили 4 патогенных штамма E. coli, по антигенному профилю соответствовавшие К99:О141 (№ 1), F41:O26 (№ 2), F41(№ 3), K88:O157(№ 4).

Эффективность антибиотикотерапии при колиинфекции прежде всего зависит от выбранной стратегии лечения и устойчивости микроорганизма к определенному антибактериальному препарату. В связи с чем появилась необходимость провести исследования по мониторингу антибиотикорезистентности, выделенных изолятов E. coli, к различным антибактериальным препаратам, применяемым в исследуемых хозяйствах.

По полученным результатам, которые представлены в таблице 1, выделенные штаммы отнесли к устойчивым (задержка роста менее 15 мм), промежуточным (задержка роста 15-25 мм) и чувствительным (задержка роста более 25 мм) [2].

Таблица 1 Антибиотикочувствительность выделенных штаммов кишечной палочки

№ п/п	Наименование дисков с препаратами	Диаметры подавления зон роста культур, мм
		№1	№2	№3	№4
1	Амоксиклав	10	9	4	10
2	Тетрациклин	1	13	11	13
3	Пефлоксацин	17	16	16	19
4	Гентамицин	13	8	8	7
5	Ципрофлоксацин	21	16	15	22
6	Оксациллин	1	0	0	0
7	Азитромицин	3	3	2	10
8	Цефуроксим	11	5	11	15
9	Цефтазидим	13	10	10	11

Проанализировав таблицу, можно сделать вывод о том, что исследуемые изоляты устойчивы к большинству используемых антибиотикам. Наибольшая антибиотическая активность в отношении выделенных штаммов эшерихий отмечается у ципрофлоксацина и пефлоксацина, относящихся к классу фторхинолонов. Однако эти препараты показали промежуточный результат, это дает основания утверждать, что ценность этих препаратов для лечения инфекций, вызванных энтеро-токсигенной кишечной палочкой, снижается. Наименьшей активностью в отношении выделенных штаммов E. coli среди сравниваемых антибиотиков обладали амоксиклав, оксациллин, гентамицн, азитромицин.

Таким образом, проведенные исследования показали, что среди кишечных палочек широко распространены антибиотикоустойчивые штаммы. В связи с этим, в качестве альтернативы антибиотикам на первый план выходят биопрепараты, обладающие направленным патогенетическим действием учитывая распространенные и главные факторы патогенности кишечной палочки. Одним из таких препаратов может являться анатоксин, полученный путем инактивации комплекса экзотоксинов кишечной палочки с добавлением адъювантного комплекса в виде пирогенала и полиакриловой кислоты.

Результаты исследований по профилактической эффективности анатоксинов у крупного рогатого скота отражены в таблице 2, из материалов которой видно, что в первой группе эшерихиозная инфекция была зарегистрирована у 2 телят, при этом диарею у них удалось купировать в течение 3 дней, а на 5 день телята полностью выздоровели. Таким образом, профилактическая эффективность заявляемой вакцины составила 92%. Во 2-ой группе эшерихиозная инфекция была зарегистрирована у 5 телят, причём у одного телёнка она протекала очень тяжело и закончилась гибелью животного. Профилактическая эффективность аналога составила 80%. В третьей опытной группе из 25 полученных телят заболело 6, что составило 24% заболеваемости и 33,3% летальности при 2 погибших животных. В четвертой группе эшерихиозная инфекция была зарегистрирована у 8 телят, из них у троих телят она протекала очень тяжело и закончилась гибелью животных. Профилактическая эффективность в группе составила 68%. В пятой группе из 25 телят заболело 18 животных, из которых 5 пали. Таким образом, в 3 группе заболеваемость составила 72%, а летальность - 27,8%, что свидетельствует о значительной тяжести болезни.

Таблица 2 Сравнительная эффективность использования анатоксинов при эшерихиозе у телят

Группа животных	Препараты	Кол-во телят в группе	Заболело, гол/ Заболеваемость, %	Защита (эффективность), %	Пало, гол.	Летальность, %	Сохранность, %
1 Опыт	анатоксин с адъювантным комплексом	25	2/8	92	0	0	100
2 Опыт	анатоксин с пирогеналом	25	5/20	80	1	20	96
3 Опыт	анатоксин с полиакриловой кислотой	25	6/24	76	2	33,3	92
4 Контр. анатоксин без адъювантов	анатоксин без адъювантов	25	8/32	68	3	37,5	88
5 Контр. - с антибиотиками	интактные	25	18/72	-	5	27,8	80

Следовательно, применение анатоксина с адъювантным комплексом позволило более эффективно профилактировать заболевание телят эшерихиозной инфекцией. Заболеваемость телят привитых заявляемой вакциной составила 8%, а сохранность 100%, тогда как при использо­вании анатоксина только с пирогеналом заболеваемость телят составила 20%, а сохранность 96%, анатоксина с полиакриловой кислотой - за­болеваемость 24%, сохранность 92%, анатоксина без адьювантов - заболеваемость 32%, сохранность 88%. В группе животных отрицательного контроля заболеваемость телят острой кишечной инфекцией составила 72%, а сохранность 80%.

Результаты проведенного исследования по изучению профилактической эффективности применения препаратов у свиней представлены в таблице 3, из материалов которой видно, что в 1-й группе от 5 свиноматок было получено 53 поросят, из которых заболело 8 голов и пало 2. Заболеваемость по группе составила 15,1%, смертность 3,8%. Следовательно, профилактическая эффективность анатоксина с адъювантным комплексом составила 84,9% при сохранности поросят в группе 96,2%. Во 2-й группе, где свиноматки иммунизировались анатоксином с пирогеналом, родилось 52 поросенка, из которых 12 заболело и 4 пало. Заболеваемость по этой группе составила 23,1%, смертность 7,7%, профилактическая эффективность 78,9%, при сохранности 92,3%. В 3-й группе было получено 54 поросёнка, из них 14 заболело, 6 пало. Заболеваемость составила 25,9%, смертность 11,1%, профилактическая эффективность 74,1%, а сохранность 88,8%. В четвертой группе, где свиноматки вакцинировались анатоксином без адъювантов, родилось 53 поросенка, из них 20 заболело, 8 пало. Заболеваемость составила 37,7%, смертность 15,1%, профилактическая эффективность 62,3%, а сохранность 84,9%. В 5-й группе было получено 53 поросёнка, из них 28 заболело, 9 пало. Заболеваемость составила 52,8%, смертность 17%, сохранность 83%.

Таблица 3 Сравнительная эффективность использования анатоксинов для профилактики эшерихиоза у поросят

Группа животных	Препараты	Получено поросят	Заболело		Пало		Профилактическая эффективность, %	Сохранность, %
			гол.	%	гол.	%
1 Опыт	анатоксин с адъювантным комплексом	53	8	15,1	2	3,8	84,9	96,2
2 Опыт	анатоксин с пирогеналом	52	12	23,1	4	7,7	78,9	92,3
3 Опыт	анатоксин с полиакриловой кислотой	54	14	25,9	6	11,1	74,1	88,8
4 Контр. анатоксин без адъювантов	анатоксин без адъювантов	53	20	37,7	8	15,1	62,3	84,9
5 Контр. - с антибиотиками	интактные	53	28	52,8	9	17,0	-	83,0

Следовательно, применение анатоксина с адъювантным комплексом против эшерихиоза в сочетании с двумя адъювантами - пи-рогеналом и полиакриловой кислотой позволило более эффективно профилактировать заболевание поросят энтеротоксигенной эшерихи-озной инфекцией. При этом заболеваемость снизилась по сравнению со второй опытной группой на 8%, опытной группой № 3 на 10,8%, четвертой группой на 22,6%, а в сравнении с группой отрицательного контроля на 37,7%, при этом падеж сократился в 2-4,5 раза, что свидетельствует о высокой эффективности анатоксина с адъювантным комплексом.

Заключение. Проблема эффективного лечения эшерихиоза остается актуальной и окончательно не решенной. Образуется большое количество полирезистентных штаммов бактерий в результате мутаций патогенов, под действием антибиотических веществ. Проведенный анализ антибиотикочувствительности выделенных штаммов E. coli показал высокий уровень их устойчивости к ряду антибактериальных препаратов, активно применяемых в ветеринарной практике. В результате установлено, что все выделенные баккультуры E. coli были резистентны к амоксиклаву, тетрациклину, гентамицину, оксациллину, азитромицину, цефтазидиму и у бактерий этого вида формируется высокая антибиотикоустойчивость. Данные лекарственные средства применять для лечения колиинфекции нецелесообразно. Для эффективной борьбы с эшерихиозом необходим комплексный подход к данной проблеме. Важнейшим элементом является мониторинг устойчивости штаммов в популяции бактерий. На основе мониторинга определяются препараты выбора. Назначение антибиотиков только после получения данных о возбудителе инфекции и его антибиотикограммы.

Поскольку некоторые антибиотические препараты обладают рядом побочных действий: аллергические реакции, нарушение микробного консорциумы желудочно-кишечного тракта, возможность развития эн-дотоксического шока и, как говорилось ранее, возникновение стойкой резистентности микроорганизмов, рекомендуется обратить внимание на альтернативные схемы лечения энтеропатогенных инфекций. При этом одним из перспективных путей выхода из этой ситуации является применение новых биопрепаратов, в том числе на основе инактивированных токсинов кишечной палочки. Эффективность проведения иммунизации супоросных свиней и стельных коров инактивированными экзотоксинами бактерии ETEC достаточно высока. Сохранность у иммунизированных телят составила 100 %, при защитном эффекте в 92%, а у поросят эти показатели были на уровне 96,2% и 84,9% соответственно. Таким образом, серия препаратов на основе комплексного токсоидно-го компонента в сочетании с адъювантами - пирогеналом и полиакриловой кислотой при иммунизации супоросных свиноматок и стельных коров обеспечивает профилактический защитный эффект в отношении энтеротоксигенного эшерихиоза и может являться альтернативой применения антибиотиков.

Список литературы:

1. Макаров Ю.А. Кишечные инфекции новорожденных телят бактериальной этиологии/ Ю.А. Макаров, Н.Е. Горковенко, А.М. Кузьменко// Доклады РАСХН. 2009. № 2. С. 46-49.
2. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам. Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы: методические указания (МУК 4.2.1890-04). Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России. 2004. 91 с.
3. Скориков А.В. Эпизоотическая ситуация по колибактериозу поросят в Краснодарском крае/ А.В. Скориков, А.Ф. Дмитриев, В.И. Терехов// Ветеринария Кубани. 2015. № 4. С. 3-6.
4. Терехов В. И. Эпизоотическая ситуация по колибактериозу телят в Краснодарском крае// Ветеринария Кубани. 2016. № 3. С. 15-18.
5. Тищенко А.С. Специфическая профилактика эшерихиоза, вызваного эн-теротоксигенными вариантами Escherichia coli/ А.С. Тищенко, Е.И. Семенова// Эффективное животноводство. 2022. № 2 (177). С. 62-63.
6. Тищенко А.С. Экзотоксины патогенных Escherichia coli/ А.С. Тищенко, А.В. Степаненко, В.И. Терехов// Ветеринария Кубани. 2020. № 5. С. 3-7.
7. Турлюн В.И. Изучение возраста и живой массы при первом осеменении тёлок голштинской породы в условиях интенсивной технологии производства молока/ В.И. Турлюн, И.Н. Тузов, П.П. Яковенко// Труды Кубанского государственного аграрного университета. 2015. № 56. С. 196-200.
8. Dubreuil J.D., Isaacson R.E., Schifferli D.M. Animal enterotoxigenic Escherichia coli// EcoSal Plus, 2016. 7(1). doi:10.1128/ecosalplus.ESP-0006-2016.
9. Hariharan H., Coles M., Poole D., Page R. Antibiotic resistance among enterotoxigenic Escherichia coli from piglets and calves with diarrhea// Canad. veter. J., 2004. 45(7): 605-606. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/ PMC548641.
10. Jang J, Hur H.G., Sadowsky M.J., Byappanahalli M.N., Yan T., Ishii S. Environmental Escherichia coli: ecology and public health implications-a review// J Appl Microbiol. 2017 Sep; 123 (3): 570-581. doi: 10.1111/jam.13468.

Резюме. Проблема терапии эшерихиозной инфекции, повсеместно распространенной на территории России, ближнего и дальнего зарубежья, остается крайне актуальной для ветеринарных специалистов. Целью исследования послужило определение чувствительности различных штаммов E. coli к антибиотикам и решение задачи выбора новых способов лечения и профилактики энтеротоксигенной эшерихиозной инфекции у молодняка крупного рогатого скота и свиней. Материалами исследования служили эпизоотические штаммы кишечной палочки, выделенные в неблагополучных хозяйствах от больных телят и поросят. Для определения чувствительности выделенных штаммов кишечной палочки к антибактериальным препаратам применяли дискодиффузионный метод в агаре с использованием стандартных индикаторных дисков. Профилактик-тическую эффективность анатоксинов, полученных путем соединения эшерихи-озного антигенного токсоидного компонента и адъювантов, определяли на базе неблагополучных по энтеротоксигенному эшерихиозу скотоводческих и свиноводческих хозяйствах. В результате исследований установлено, что выделенные изоляты устойчивы к большинству используемым антибиотикам, применяемым при лечении животных. Максимальную антибиотическую активность наблюдали у препаратов класса фторхинолонов, но они показали промежуточный результат. Исходя из этого результата, предложена альтернатива в терапии эшерихиоза молодняка с использованием препаратов на основе инактивированных токсинов кишечной палочки с добавлением адъювантов. При изучении эффективности предложенного биопрепарата, содержащего анатоксин с адьювантным комплексом (пирогенал и раствор полиакриловой кислоты), сохранность у иммунизированных телят составила 100 % при защитном эффекте 92%, у поросят 96,2% и 84,9% соответственно. Таким образом, применение биопрепаратов на основе инактивированных токсинов кишечной палочки в сочетании с адъювантами при иммунизации животных, может являться одной их альтернатив использования антибиотиков в условиях высокой антибиотикорезистности возбудителя эшерихиоза.

Ключевые слова: кишечная палочка, эшерихиоз, экзотоксины, антибиотики, анатоксин, адъюванты, телята, поросята, антибиотикорезистентность.

Сведения об авторах:

Тищенко Александр Сергеевич, кандидат ветеринарных наук, заведующий лабораторией микробиологии центра биотехнологий, доцент кафедры микробиологии, эпизоотологии и вирусологии ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-928-4692399; e-mail: mephisto83@inbox.ru.

Кощаев Андрей Георгиевич, доктор биологических наук, академик Российской академии наук, профессор, проректор по научной работе ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубили-на»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-861-2215637; e-mail: koshhaev.a@kubsau.ru.

Волостнова Анастасия Александровна, лаборант лаборатории микробиологии центра биотехнологий ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-962-0198362; e-mail: nas.vol@mail.ru.

Терехов Владимир Иванович, доктор биологических наук, профессор ГБПОУ КК «Пашковский сельскохозяйственный колледж»; 350910, г. Краснодар, ул. Е. Бершанской, 220; тел.: 8-988-4742115; e-mail: vterekhov@list.ru.

Ответственный за переписку с редакцией: Яковенко Павел Павлович, кандидат ветеринарных наук, научный сотрудник лаборатории микробиологии центра биотехнологий, доцент кафедры микробиологии, эпизоотологии и вирусологии факультета ветеринарной медицины ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубили-на»; 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, 13; тел.: 8-900-2360273; e-mail: pavel2912@mail.ru.

	Полезные ссылки
Департамент ветеринарии Краснодарского края Ассоциация Практикующих Ветеринарных Врачей