О. А. Верковский, доктор биологических наук, заведующий отделом иммунологии НПО НАР ВАК Теоретические и практические достижения ветеринарной науки значительно расширили арсенал методов диагностики и средств специфической профилактики инфекционных болезней крупного рогатого скота. При этом развитие новых подходов к предупреждению инфекционных болезней и изучение механизмов иммунологической защиты животных неразрывно связаны с разработкой и внедрением новых методов и технологий, основанных на современных представлениях об эффекторных механизмах иммунитета, среди которых главное место занимает взаимодействие анти ген-антитело. Иммуноферментный анализ (ИФА) к настоящему времени прошел путь от новейшей научной разработки до рутинного метода в клинической диагностике. С его помощью можно проводить как массовое обследование стад, так и поставить окончательный диагноз у конкретного животного. По сравнению с другими методами выявления антигенов и антител профессионально разработанные иммуноферментные тест-системы обладают следующими преимуществами: - высокой чувствительностью, позволяющей выявлять концентрации белка в диапазоне нг/мл, и специфичностью;
- воспроизводимостью полученных результатов;
- стабильностью при хранении всех необходимых реагентов (до года и более);
- простотой проведения реакции и возможностью использования минимальных объемов исследуемого материала;
- наличием инструментального (в качественном и количественном варианте) учета реакции и возможностью автоматизации всех ее этапов.
При инструментальной оценке результат ИФА может быть качественным (позволяет судить о наличии или отсутствии специфических антител) и полуколичественным (позволяет получить информацию об относительном содержании антител в испытуемых пробах). Оба варианта являются приблизительными, однако они намного точнее методов определения титров антител в реакциях с визуальным учетом. Вышеперечисленные преимущества определили широкое применение ИФАво всех областях лабораторной диагностики, и в настоящее время, согласно стандартам МЭБ (Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals, 2004, http:// www.oie.int/eng/normes/mmanual/A_00005.htm), ИФА, наряду с традиционными методами, является узаконенным методом диагностики лейкоза, ящура и бруцеллеза крупного рогатого скота. Специалисты НПО НАРВАК в сотрудничестве с ведущими отечественными и зарубежными учеными внедрили в ветеринарную практику нашей страны ИФА-наборы для диагностики лейкоза и ящура, проводят эксперименты по созданию ИФА-набора для диагностики бруцеллеза. Условия применения данных наборов - любые лаборатории, оснащенные стандартным оборудованием для ИФА. ИФА- диагностика лейкоза "Набор для выявления антител к вирусу лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС методом им-муноферментного анализа (ИфА)", выпускаемый в двух вариантах: - И ФА-набор для проведения массовых скри-нинговых исследований - скринирующий тест;
- ИФА-набор (VeriTest) для подтверждения положительных результатов - подтверждающий (конфирмационный или верификационный) тест.
Как и большинство зарубежных аналогов оба варианта ИФА предназначены для выявления антител к поверхностному гликопротеину др51 ВЛКРС в сыворотке крови и молоке животных. Использование подтверждающего ИфА-набо-ра VeriTest является очень важным моментом при диагностических исследованиях на лейкоз, поскольку одним из наиболее важных вопросов при проведении ИФА является вопрос о специфичности результатов. Так при применении только скриниру-ющего теста, некоторые пробы, взятые от животных с различной патологией, могут давать ложнополо-жительные результаты вследствие синтеза перекрестно-реагирующих антител. Поэтому возможное существование ложнопозитивных результатов ставит перед лабораторным работником задачу их разграничения с истинным выявлением антител к ВЛКРС. Для решения этой задачи и служит ИФА-набор VeriTest, который применяется для подтверждения положительных результатов скринирующего теста. Таким образом, алгоритм серологического обследования на лейкоз при совместном применении РИД и ИФА следующий. 1) Животные положительные в РИД считаются инфицированными, в ИФА не проверяются и подлежат выбраковке. 2) Отрицательные результаты в РИД, должны быть перепроверены в ИФА и только после этого животные могут считаться серонегативными. 3) Первичное тестирование проб в ИФА проводится в скринирующем тесте и при отсутствии положительной реакции выдается заключение об отсутствии серологических данных инфицирования ВЛКРС. При положительном результате теста проба подлежит исследованию в подтверждающем тесте. При отрицательном результате подтверждающего теста, проба считается серонегативной по ВЛКРС, положительный результат является основанием для окончательного подтверждения серологического диагноза на лейкоз. Такая схема проведения диагностических исследование за два последних года с успехом апробирована в ряде ветеринарных лабораторий нашей страны и показан ее практический эффект. Если имеется возможность, то вместо скринирующего ИФА-набора можно сразу же использовать ИФА-набор VeriTest и тем самым упростить алгоритм серологического обследования на лейкоз и сократить число необходимых анализов. ИФА-диагностика ящура "Набор для выявления антител к вирусу ящура ЗАВС иммуноферментным методом (ИФА)" предназначен для выявления постинфекционных антител в сыворотке крови крупного рогатого скота. Набор позволяет обнаружить антитела к неструктурному белку вируса ящура - ЗАВС (в системе используется рекомбинантный белок MSP ЗАВС в качестве антигена), который отсутствует (или скрыт для распознавания клетками иммунной системы) в инактивированных вакцинных препаратах. Поэтому у здоровых или вакцинированных животных антител к ЗАВС белку нет (реакция отрицательная), а у экспериментально зараженных или спонтанно инфицированных животных (даже ранее вакцинированных), в организме которых присутствовал живой вирус ящура - антитела данной специфичности есть (реакция положительная). Данное заключение демонстрируют результаты, полученные нами при испытании данного набора в профильной лаборатории ФГУ ВНИИЗЖ (табл.1). Для проверки были использованы сыворотки крови крупного рогатого скота, полученные от. а) животных, переболевших ящуром (в динамике с интервалом 3- 5 суток после заражения); б) от животных, вакцинированных против ящура; в) животных сначала вакцинированных против ящура, затем экспериментально зараженных вирулентным вирусом; г) от клинически здоровых неиммунных животных. Исследования проводили в сравнительном аспекте с набором аналогичной направленности и с параллельным определением активности испытуемых сывороток в реакции микронейтрализации и в стандартном варианте непрямого ЙфА, где в качестве антигена используются структурные белки вириона. Таким образом, отличительной особенностью ИФА-набора для выявления антител к антигену ЗАВС вируса ящура является его способность дифференцировать здоровых и вакцинированных животных от инфицированных и вирусоносите-лей, поэтому его использование незаменимо при проведении оздоровительных и мониторинговых мероприятий. ИФА- диагностика бруцеллеза В течение последних лет ряд зарубежных компаний выпускают ИФА-наборы, предназначенные для выявления антител к возбудителям бруцеллеза крупного рогатого скота, овец и коз (Brucella abortus и Brucella melitensis). В настоящее время в НПО проводятся подобные исследования. В лабораторных исследованиях обычно используют два варианта ИФА: непрямой и конкурентный. Однако на практике наибольшей ценностью обладает конкурентный ИФА, отличительной особенностью которого является возможность дифференцировать животных инфицированных бруцеллами от животных, вакцинированных вакциной из штамма 19 (и возможно из штамма 82). Метод основан на конкурентном взаимодействии моноклональных антител к о-полисахариду S-LPS антигена В. abortus и сывороточных антител к бруцеллам с S-LPS антигеном В. abortus. При отсутствии в исследуемой сыворотке крови антител к В. abortus или В. melitensis, МкА связывается с иммобилизованным S-LPS антигеном, формируя при этом комплекс антиген-антитело. Полученный иммунный комплекс выявляется после взаимодействия с антивидовым конъюгатом, фермент которого после добавления субстрата, вызывает разложение субстрат-индикаторного раствора и образование окрашенного продукта. Если исследуемая сыворотка содержит антитела к бруцеллам, то они конкурируют с МкА за связывание с сайтами антигена и препятствуют взаимодействию МкА с о-полисахаридом S-LPS антигена, в результате чего интенсивность окраски снижается. Сыворотка крови животных, вакцинированных вакциной из штамма 19, содержит низкоаффинные антитела, которые не конкурируют с МкА за связывание с антигеном, что приводит к отрицательной реакции. Однако в ряде случаев через 6 месяцев после вакцинации животные могут реагировать положительно. Нами были проведены предварительные испытания двух тест-систем с использованием охарактеризованных в РА сывороток крови крупного рогатого, полученных из ФГУ ВГНКИ (табл.2). Проведенные исследования показали, что по чувствительности оба варианта ИФА превосходят РА, однако для подтверждения диагностической ценности конкурентного метода проводятся более расширенные испытания с хорошо охарактеризованной панелью сывороток крови, полученных от больных и вакцинированных животных. Есть предположение, что данная тест-система может быть также использована в медицине для выявления антител к бруцеллам у инфицированных людей. Таблица 1 Группа животных | Результаты в РН и стандартном ИФА * | Результаты в ЗАВС ИФА (НАРВАК) | Результаты в ЗАВС ИФА(Межд.Со)** | Неиммунные | | - | | Вакцинированные | + | - | | Инфицированные | + | + | + | Вакцинированные, затем экспериментально зараженные | + | + 9/20 на 7-е сутки п.з. | + 0/5 на 7-е сутки п.з. | Таблица 2 N° сывороток | Титр антител в РА | Результат в конкурентном ИФА | Титр антител в непрямом ИФА | % ингибирования | Интерпретация результата | 1. | - | 17,4 | | - | 2 | - | 13,8 | | - | 3 | - | 14,4 | - | - | 4 | - | 18,4 | - | - | 5 | - | 72,7 | + | 1:800 | 6 | 1:50 | 75,9 | + | 1:1600 | 7 | 1:50 | 88,7 | + | > 1:3200 | 8 | - | 73,1 | Л. | Н/и | 9 | - | 77,0 | + | 1:1600 | 10. | 1:50 | 78,6 | + | 1:800 | 11. | 1:50 | 81,2 | + | 1:100 |
|