УДК 577.19
DOI 10.33861/2071-8020-2025-6-19-22
Оригинальное эмпирическое исследование
Устьянцев Д. А., Постольник Т. С., Плеханова Е. В, Маклецова М. Г., Зеленков А. П., Зеленкова Г. А. Федеральное государственное
бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Донской государственный технический университет»,
Ростовская область, г. Ростов-на-Дону
Аннотация. Исследовании продемонстрировано влияние полиамина – путресцина на выводимость суточного молодняка, при введении его в оплодотворённое яйцо кур при микроклиматическом стрессе, вызванном как понижением (холодовой микроклиматический стресс), так и повышением температуры (тепловой микроклиматический стресс) при инкубации. При введении путресцина на 6 день инкубации при холодовом микроклиматическом стрессе наблюдалось увеличение выводимости молодняка цыплят на 2-3% в первые сутки по сравнению с группой «Холодового стресса», для которой характерно снижение выводимости и выживаемости цыплят. При воздействии теплового стресса также увеличилась выводимость цыплят при введении путресцина в период инкубации на 1-4 % по сравнению с группой, цыплята которой находились в условиях теплового микроклиматического стресса. Результаты подтверждают значимость полиаминов в регуляции становления онтогенеза и повышении выводимости здоровых цыплят. Исследование открывает перспективы для разработки новых способов интенсификации птицеводства в условиях микроклиматического стресса.
Ключевые слова: полиамины, путресцин, инкубация, микроклиматический стресс, птицеводство, инкубационное яйцо, куры, зоотехнические показатели, экстерьер, выводимость, сохранность.
Интенсификация птицеводства, направленная на повышение продуктивности и снижение затрат, ставит перед ветеринарами, зоотехниками и биологами задачу поиска новых эффективных методов оптимизации процессов инкубации и выращивания молодняка. Одним из перспективных направлений является использование биорегуляторов, способных модулировать физиологические процессы и повышать устойчивость птицы к неблагоприятным факторам окружающей среды.
Путресцин, являющийся полиамином, играет важную роль в регуляции клеточного роста, дифференцировки и апоптоза, а также участвует в стрессовых реакциях организма. Многочисленные исследования свидетельствуют о положительном влиянии путресцина на различные физиологические показатели у животных, включая улучшение роста [1, 2], повышение иммунитета и устойчивости к стрессу [3].
В птицеводстве изучение эффектов путресцина находится на начальном этапе, однако предварительные данные указывают на его потенциальную роль в оптимизации инкубационных режимов и улучшении качества молодняка [2, 4, 5].
Микроклиматический стресс, связанный с колебаниями температуры и влажности в птичниках, особенно негативно сказывается на молодняке [6, 7], приводя к снижению роста, повышению заболеваемости и увеличению смертности [8, 9]. В этой связи, изучение возможности использования путресцина для повышения устойчивости молодняка сельскохозяйственных птиц к микроклиматическому стрессу представляет значительный практический интерес.
Таким образом, целью настоящего исследования является оценка влияния на рост и развитие молодняка сельскохозяйственных птиц в норме и при микроклиматическом стрессе после введения путресцина в период инкубации яиц.
Целью исследований стала оценка влияния введённого путресцина (в период инкубации яиц) на выводимый молодняк птиц в норме и при микроклиматическом стрессе.
Для достижения поставленной цели были определены следующие задачи:
1. Разработать способ введения полиамина в оплодотворенное яйцо.
2. Провести сравнительный анализ двух способов введения путресцина в оплодотворенное яйцо: методом пассивной диффузии при погружении в раствор полиамина – 1, и инъекцией раствора путресцина через прокол в скорлупе яйца – 2.
3. Оценить влияние путресцина на качественные и количественные характеристики оплодотворенного яйца, а также развитие эмбриона и, в последующем, молодняка.
4. Оценить антистрессорный и адаптивный эффекты полиамина (экзогенного введённого в период раннего эмбриогенеза) на организм молодняка птиц в условиях микроклиматического стресса в инкубаторе: с низкой и высокой температурой.
Материалы и методы исследований. Экспериментальная часть исследования проводилась на производстве ООО «Аксайская птицефабрика», Аксайского района, Ростовской области, в период 2024-2025 гг. Объектом исследований стали оплодотворённые яйца кур несушек кросса Браун Ник.
Перед началом эксперимента яйца отбирали согласно «Руководству по содержанию кур несушек кросса «Браун Ник» (2020 г.). Отбирали каждое яйцо от разных кур несушек, чистое и без трещин, яйца перед инкубацией калибровали (разница в массе яиц составила – не более 7 г (55,9±6,3 г)).
Инкубацию проводили в инкубаторе марки «Ремил 5000» (Россия) при нормоксических (21% O2) оптимальных условиях в соответствии с «Инструкцией по эксплуатации цифрового инкубатора Рэмил-5000 ЦУ серии «М»» (2021 г.): I период (1-13 день) – 37,7 – 37,8°C, влажность 55-60%, при автоматическом вращении каждый час; II период (14-19 день) – 37,5°C, влажность 45-50%; период вывода (20-21 день) – при температуре 36,8 – 37,2°C, влажность 65-70%. Проверку инкубационных качеств на овоскопе и контроль усушки проводили на 7, 11 и 19 дни инкубации. Яйца были помещены в инкубационные лотки тупым концом вверх.
Для разработки способа введения путресцина в оплодотворенное яйцо было изучено влияние двух способов введения путресцина в оплодотворенное яйцо: метод пассивной диффузии – с погружением в раствор с путресцином и группа 2 инъекция раствора с путресцином через «окно» в скорлупе яйца, везде использовался 0,05% раствор путресцина. Выбор путресцина обусловлен его низкой молекулярной массой равной 88,1515 г/моль, что делает его способным проходить сквозь поры яичной скорлупы, в то время как скорлупа яиц проницаема для веществ с молекулярной массой не более 146 г/моль.
В первой серии экспериментов для оценки эффективности способов введения путресцина в инкубационное яйцо были созданы три группы:
а) Контрольная группа – нативное инкубационное яйцо (100 штук);
б) Первая опытная группа – обработанная методом погружения яйца в 0,05% раствор путресцина на протяжении 3-х минут при температуре 10-16°С (100 штук);
в) Вторая опытная группа – обработанная методом прокалывания инкубационного яйца (инъекции) через небольшое отверстие в скорлупе и введение 0,05% раствора путресцина на хориоалланто-исную мембрану (in ovo) (100 штук).
Во второй серии экспериментов для решения поставленных задач по изучению адаптивных и антистрессорных эффектов путресцина из 600 яиц были созданы следующие группы:
а) Контрольная группа – нативное инкубационное яйцо (100 яиц);
б) Первая опытная группа (Стресс) – оплодотворённые яйца кур, которые в ходе инкубации подвергали микроклиматическому стрессу с низкой температурой (100 яиц);
в) Вторая опытная группа (Путресцин + стресс) – оплодотворенные яйца кур, в которые вводили 0,05% раствор путресцина методом пассивной диффузии, с последующим микроклиматическим стрессом с низкой температурой инкубации (100 яиц);
Модель холодового микроклиматического стресса создавалась при снижении температуры инкубации до 35,8-36,7°C в течение 24 часов на 8-, 14- и 20-сутки инкубации оплодотворённых яиц.
г) Контрольная группа – нативное инкубационное яйцо (100 яиц);
д) Первая опытная группа (Стресс) – оплодотворённые яйца кур, которые в ходе инкубации подвергали микроклиматическому стрессу с высокой температурой (100 яиц);
е) Вторая опытная группа (Путресцин + стресс) – оплодотворенные яйца кур, в которые вводили 0,05% раствор путресцина методом пассивной диффузии, с последующим микроклиматическим стрессом с высокой температурой инкубации (100 яиц);
Модель теплового стресса была создана при увеличении температуры инкубации до 38,2 - 38,8°C в течение 24 часов на 8-, 14- и 20-сутки инкубации оплодотворённых яиц.
Тeмпepатурно-влaжнoстный режим контролировали сначала в камере инкубатора с помощью встроенных в него датчиков влажности и температуры.
Определение содержания полиаминов в мозге суточного молодняка. Образцы ткани мозга суточного молодняка помещали в непроницаемые контейнеры, подвергали криогенной заморозке в жидком азоте (при t=-196°C) и хранили при температуре -80°C.
Содержание путресцина у цыплят определяли в образцах крови и мозга методом ГХ-МС (газовой хроматографии-масс-спектрометрии) в лаборатории ДГТУ модифицированным нами методом Chen c соавторами (Chen et al. 2008). Замороженные образцы ткани мозга стандартно гомогенизировали и 100 мг полученного гомогената переносили в пробирку V = 1,5 мл. Для осаждения белков в эту пробу добавляли 1 мл 10% трихлоруксусной кислоты, затем центрифугировали при 10 000 об/мин также при 25°C в течение 10 мин. Надосадочную жидкость отбирали и переносили в пробирку. Далее, в эту же пробирку добавляли 10 мкл рабочего раствора внутреннего стандарта - 1,4 - гептан. После завершения этапов экстракции, реакционный раствор подвергали деривати-зации с использованием 7 мкл бензоилхлорида.
Раствор путресцина готовили с получением конечной концентрации 10 мг/мл в 0,1 М растворе HCl.
Анализ ГХ-МС был выполнен на сетевой ГХ-системы 7890B с масс-селективным детектором (МСД) 5977B (Agilent Technologies), с колонкой J&W Scientific Ultra-2 (12,5 м, 0,2 мм ID, толщина пленки 0,33 мкм, Agilent Technologies). В качестве газа-носителя использовался сверхчистый газообразный гелий. Скорость потока газа-носителя поддерживалась на уровне 0,8 мл/мин. Температура на входе поддерживалась на уровне 250°C, а интерфейс ГХ-МС – на уровне 280°C. Температурная программа печи была запущена при 100°C и удерживалась в течение 2 мин, после чего следовал подъем со скоростью 8°C/мин до 280°C. Температурные настройки МСД составляли 230°C на источнике ионов и 150°C на масс-фильтре. МСД работал на основе электронной ионизации (EI). Давление в колонке поддерживалось на уровне 65 кПа. Аликвоту дериватизированного образца объемом 0,2 мкл вводили в инжектор газового хроматографа с помощью автоматического пробоотборника (инжектор Agilent Technologies серии 7693A). Ввод пробы осуществлялся в режиме разделения потока с соотношением 10:1.
Для статистической обработки экспериментальных данных применяли графические, расчетные и аналитические средства MS Excel.
Результаты исследований и их обсуждение. Сравнительный анализ двух способов введения путресцина показал, что оба способа являются эффективными модуляторами обмена полиаминов в мозге суточных цыплят. Так содержание путресцина в мозге цыплят в группе 1 с погружением и в группе 2 с инъекцией увеличивалось в 4,2 (р<0,001) и в 4,7 раз (р<0,001) по сравнению с контролем соответственно (табл. 1). Как следствие влияния путресцина на обмен спермидина и спермина можно рассматривать его влияние на показатели роста и развития молодняка.
Выводимости суточного молодняка в двух опытных группах также была увеличена по сравнению с контрольной группой. Так выводимость цыплят составила: в контрольной группе 86 голов (остальные: 4 неоплодотворённые яйца, 3 задохлика, 4 замерших, 3 кровяные кольца), в первой опытной группе 88 голов (остальные: 4 неоплодотворённые яйца, 3 задохлика, 3 замерших, 2 кровяные кольца), во второй опытной группе 88 голов (остальные: 4 неоплодотворённые яйца, 2 задохлика, 4 замерших, 2 кровяные кольца). Процент выводимости в трёх группах составил: 86% в контрольной группе, 88% в первой опытной группе, и 88% во второй опытной группе, соответственно.
Затем взвешивали суточных цыплят по стандартной методике, натощак. Масса цыплят соответствовала стандарту кросса Браун Ник.
Экстерьер цыплят определяли по шкале «оптистарт+». Между всеми опытными группами экстерьер был идентичен, в целом хороший: рефлексы в норме; пупочное кольцо закрытое; плюсны и пальцы прямые, крепкие, без дефектов; глаза чистые; клюв без дефектов и покраснений, ноздри чистые; живот мягкий и подтянутый; пух сухой и блестящий; клоака розовая, чистая, влажная; 40,3±0,1°С; однородность не >5%. За каждый из нормативных показателей присваивался один балл (максимум 10), а при несоблюдении нормативного значения по любому показателю - присуждалось 0 баллов (табл. 1).
Таблица 1 Влияние введения путресцина на показатели суточного молодняка (n=100)
| Показатели | Контрольная группа | Опытная группа 1 | Опытная группа 2 |
|---|---|---|---|
| Выводимость цыплят, % | 86 | 88 | 88 |
| Масса ± m, г | 33,5±1,2 (n=86) | 35,2±1,4 (n=88)*** | 34,5±1,3 (n=88)*** |
| Экстерьер по шкале оптистарт, баллов | 10 | 10 | 10 |
| Содержание путресцина, мкг/г | 0,19±0,03 (n=86) | 0,9±0,22 (n=88)*** | 0,81±0,18 (n=88)*** |
Примечание: при *-p<0,05; **-p<0,01; ***-p<0.001
Обработка яиц 0,05% раствором путресцина двумя методами вызывало увеличение выводимости цыплят на 2 головы суточного молодняка больше, что составляло 2% (р<0,67) выводимости яйца больше по сравнению с нативным яйцом (группа контроль). Живая масса двух опытных групп превышала контрольную группу на 1-1,7 г (p<0.001), а экстерьер суточного молодняка не имел значительной разницы между всеми тремя группами.
Таким образом, обработка инкубационного яйца путресцином имеет положительный результат.
По полученным результатам введения путресцина в оплодотворенное яйцо был выбран метод погружения, для второго исследования, так как он требует меньше затрат времени на его применение и является экономически выгодным и целесообразным в условиях производства, по сравнению с методом инъекции путресцина.
Во втором исследовании, связанным с определением эффективности путресцина, по результатам инкубации в первом опыте (с пониженной температурой) вывелось: 84 штуки цыплят в контрольной группе (остальные: 5 неоплодотворённые яйца, 3 задохлика, 4 замерших, 4 кровяные кольца), 83 штуки цыплят в первой опытной группе (остальные: 6 неоплодотворённые яйца, 3 задохлика, 3 замерших, 5 кровяные кольца), и 86 штук цыплят во второй опытной группе (остальные: 5 неоплодотворённые яйца, 2 задохлика, 4 замерших, 3 кровяные кольца). Процент выводимости в трёх группах составил: 84% в контрольной группе, 83% в первой опытной группе, и 86% во второй опытной группе, соответственно.
По результатам инкубации во втором опыте (с повышенной температурой) вывелось: 85 штук цыплят в контрольной группе (остальные: 6 неоплодотворённые яйца, 3 задохлика, 2 замерших, 4 кровяные кольца), 82 штук цыплят в первой опытной группе (остальные: 5 неоплодотворённые яйца, 4 задохлика, 3 замерших, 6 кровяные кольца), и 86 штук цыплят во второй опытной группе (остальные: 5 неоплодотворённые яйца, 4 задохлика, 3 замерших, 2 кровяные кольца). Процент выводимости в трёх группах составил: 85% в контрольной группе, 82% в первой опытной группе, и 86% во второй опытной группе, соответственно.
Взвешивали суточных цыплят по стандартной методике, натощак. Суточная масса цыплят в первом исследовании составила: 34,24±1,22 г в контрольной группе, 31,03±2,35 г (р<0,001) в первой опытной группе, 34,9±1,18 г (р<0,001) во второй опытной группе.
Суточная масса цыплят во втором исследовании составила: 33,1±1,3 г в контрольной группе, 30,5±1,84 г (р<0,001) в первой опытной группе, 34,2±1,44 г (р<0,001) во второй опытной группе. Что соответствует стандарту кросса.
Экстерьер цыплят определяли по шкале «оптистарт+». Экстерьер суточного молодняка в первом опыте (с понижением температуры) в контрольной и опытной группе 2 был идентичен, в целом хороший: рефлексы в норме-цыплята активные, сразу подходили к поилке и к корму; пупочное кольцо чистое и хорошо закрытое; ноги чистые, без отёков; глаза чистые, открытые; клюв чистый; живот мягкий; пух сухой и блестящий; клоака розовая, чистая, влажная; температура 40,2±0,1°С; однородность не >5%. Однако по сравнению с опытной группой 1 были замечены изменения: активность цыплят была снижена, однородность составила <5%.
Во втором опыте (с повышением температуры) была аналогичная ситуация, как и в первом опыте, и в опытной группе 1 так же замечен молодняк со сниженной активностью и однородностью <5%. За каждый из нормативных показателей присваивался один балл (максимум 10), а при несоблюдении нормативного значения по любому показателю – присуждалось 0 баллов (табл. 2).
Таблица 2 Результаты инкубации суточного молодняка (n=100)
| Показатели | Контрольная группа | Опытная группа 1 (стресс) | Опытная группа 2 (путрес- цин+стресс) |
|---|---|---|---|
| Опыт с применением холодового микроклиматического стресса | |||
| Выводимость цыплят, % | 84 | 83 | 87 |
| Масса ± m, г | 34,24±1,22 (n=84) | 31,03±2,35 (n=83)*** | 34,9±1,18 (n=86)*** |
| Экстерьер по шкале оптистарт, баллов | 10 | 8 | 10 |
| ОАК | В норме | В норме | В норме |
| Опыт с применением теплового микроклиматического стресса | |||
| Выводимость цыплят, % | 85 | 82 | 86 |
| Масса ± m, г | 33,1±1,3 (n=85) | 30,5±1,84 (n=82)*** | 34,2±1,44 (n=86)*** |
| Экстерьер по шкале оптистарт, баллов | 10 | 8 | 10 |
| ОАК | В норме | В норме | В норме |
Примечание: при *-p<0,05; **-p<0,01; ***-p<0.001
Кровь суточного молодняка брали из подкрыльцовой вены и оценивали следующие показатели: эритроциты, гемоглобин, гематокрит, СОЭ и общий белок. Данные показатели в трёх группах в двух опытах были практически без изменений (табл. 3).
Таблица 3 Влияние введения путресцина в период инкубации на показатели ОАК
| Показатель | Группа | ||
|---|---|---|---|
| Контрольная | Опытная группа 1 (стресс) | Опытная группа 2 (путрес- цин+стресс) | |
| Опыт с применением холодового микроклиматического стресса | |||
| Эритроциты (RBC), 1012/л | 1,8±0,11 | 1,7±0,7 | 1,9±0,9 |
| Гемоглобин (HGB), % | 80,0±0,7 | 86,0±0,8 | 87,0±0,6 |
| Гематокрит (HCT), % | 36,0±0,33 | 37,0±0,31 | 35,0±0,8 |
| СОЭ, мм/ч | 5,0±0,3 | 5,1±0,2 | 5,1±0,2 |
| Общий белок,- г/л | 21,2±0,31 | 21,7±0,32 | 22,6±0,4 |
| Опыт с применением теплового микроклиматического стресса | |||
| Эритроциты (RBC), 1012/л | 1,8±0,1 | 1,9±0,11 | 2,0±0,13 |
| Гемоглобин (HGB), % | 84,0±0,42 | 83,0±0,58 | 84,4±0,55 |
| Гематокрит (HCT), % | 34,0±0,29 | 33,0±0,4 | 33,8±0,3 |
| СОЭ, мм/ч | 4,9±0,2 | 5,1±0,3 | 5,0±0,2 |
| Общий белок,- г/л | 20,1±0,29 | 22,0±0,35 | 21,9±0,38 |
Согласно представленным данным в таблице 2, итоги исследования отличаются определенными особенностями: обработка яиц путресцином методом погружения (опытная группа 2) способствовала в первом опыте получению на 2-3% выводимости яйца больше по сравнению с контролем и опытной группой 1 соответственно, и во втором опыте на 1-4% выводимости яйца больше по сравнению с контролем и опытной группой 1 соответственно. Однако живая масса суточного молодняка не имела значительной разницы между опытной группой 2 и контрольной группой в двух опытах, но превосходила опытную группу 1 на 3,47 г массы в первом опыте, и на 3,7 г массы во втором. Данные результаты демонстрируют, что обработка инкубационного яйца путресцином имеет положительный эффект в условиях микроклиматического стресса.
Заключение. Результаты данного исследования подчёркивают перспективность применения путресцина в качестве эффективного средства для предотвращения негативных последствий, возникших в результате микроклиматического стресса в процессе инкубации яиц сельскохозяйственной птицы. Было установлено, что наиболее эффективным методом применения полиамина является: метод погружения инкубируемого яйца в раствор. А также результаты убедительно демонстрируют положительное влияние путресцина на развитие эмбрионов во время микроклиматического стресса, что выражается в улучшении показателей выводимости, повышении жизнеспособности молодняка и оптимизации его физиолого-биохимического статуса. В частности, наблюдается улучшение массы тела выводимых цыплят. Это позволяет сделать вывод о целесообразности внедрения данной технологии в практику птицеводства для повышения рентабельности производства. Дальнейшие исследования должны быть направлены на оптимизацию дозировки путресцина, а также на изучение его взаимодействия с другими факторами, влияющими на инкубацию яиц и развитие молодняка птицы в период выращивания. Кроме того, необходимо провести углубленный анализ молекулярных механизмов, лежащих в основе положительного эффекта путресцина, что позволит разработать более эффективные стратегии повышения устойчивости сельскохозяйственной птицы к стрессовым факторам и оптимизации её продуктивных качеств.
Работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда – проект № 24-26-00225 «Способ профилактики стресс-индуцированных нарушений развития птицы при микроклиматических стрессах в процессе инкубации».
Список литературы:
1. Smith T.K. Effect of dietary putrescine on whole body growth and polyamine metabolism // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. – 1990 – 194(4) – P. 332-336
2. Qi Q., Hu C. et al. Dietary supplementation with putrescine improves growth performance and meat quality of wenchang chickens // Animals. – 2023 – 13(9) – P. 1564
3. Minois N., Carmona-Gutierrez D., Madeo F. Polyamines in aging and disease. Aging (Albany NY). – 2011 – 3(8) – P. 716-732
4. Lowkvist B., Heby O., Emanuelsson H. Essential role of the polyamines in early chick embryo development. J. Embryol. Exp. Morphol. – 1980 – 60 – P. 83-92
5. Lowkvist B., Oredsson S.M., Holm I., Emanuelsson H., Heby O. Inhibition of polyamine synthesis reduces the growth rate and delays the expression of differentiated phenotypes in primary cultures of embryonic mesoderm from chick. Cell Tissue Res. – 1987 – 249(1) – P. 151-160.
6. Vandana G.D., Sejian V. et al. Heat stress and poultry production: impact and amelioration. Int. J. Biometeorol. – 2021 – 65(2) – P. 163-179.
7. Mazzoni M., Zampiga M. et al. Effect of chronic heat stress on gastrointestinal histology and expression of feed intake-regulatory hormones in broiler chickens. Animal. – 2022 – 16(8) – P. 100600
8. Bohler M.W., Chowdhury V.S., Cline M.A., Gilbert E.R. heat stress responses in birds: a review of the neural components. Biology (Basel). – 2021 – 10(11) – P. 1095
9. Goel A. Heat stress management in poultry. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. (Berl). – 2021 – 105(6) – P. 1136-1145
Сведения об авторах:
Постольник Татьяна Сергеевна, преподаватель кафедры «Химия» ФГБОУ ВО «Донской государственный технический университет»; 344003, Ростовская область, г. Ростов-на-Дону, пл. Гагарина, 1; тел.: 8-963-3856280; e-mail: tatyana.p010@yandex.ru.
Плеханова Елизавета Валерьевна, кандидат химических наук, доцент кафедры «Химия» ФГБОУ ВО «Донской государственный технический университет»; 344003, Ростовская область, г. Ростов-на-Дону, пл. Гагарина, 1; тел.: 8-951-5381445; e-mail: plekhanova.e@gs.donstu.ru.
Маклецова Марина Геннадьевна, кандидат биологических наук, доцент, доцент кафедры «Биология и общая патология» ФГБОУ ВО «Донской государственный технический университет»; 344003, Ростовская область, г. Ростов-на-Дону, пл. Гагарина, 1; тел.: 8-951-4980323; e-mail: mgm52@bk.ru.
Зеленков Алексей Петрович, доктор сельскохозяйственных наук, доцент, профессор кафедры «Биология и общая патология» ФГБОУ ВО «Донской государственный технический университет»; 344003, Ростовская область, г. Ростов-на-Дону, пл. Гагарина, 1; тел.: 8-951-8328278; e-mail: zelenkovalex@rambler.ru.
Зеленкова Галина Александровна, доктор сельскохозяйственных наук, доцент, профессор кафедры «Биология и общая патология» ФГБОУ ВО «Донской государственный технический университет»; 344003, Ростовская область, г. Ростов-на-Дону, пл. Гагарина, 1; тел.: 8-961-3096244; e-mail: galinazelenkova2025@gmail.com
Ответственный за переписку с редакцией: Устьянцев Данил Алексеевич, аспирант кафедры «Биология и общая патология» ФГБОУ ВО «Донской государственный технический университет»; 344003, Ростовская область, г. Ростов-на-Дону, пл. Гагарина, 1; тел.: 8-989-6313099; e-mail: ustjantsev.danil@yandex.ru
Заявленный вклад авторов:
Устьянцев Д.А.: разработка концепции, разработка методологии, курирование данных, формальный анализ, проведение исследования, визуализация, валидация результатов, написание черновика рукописи.
Постольник Т.С.: разработка концепции, разработка методологии, курирование данных, проведение исследования, написание черновика рукописи.
Плеханова Е.В.: разработка концепции, разработка методологии, формальный анализ, проведение исследования, визуализация, написание черновика рукописи.
Маклецова М.Г.: разработка концепции, разработка методологии, написание рукописи – редактирование.
Зеленков А.П.: проведение исследования, написание рукописи – редактирование.
Зеленкова Г.А.: научное руководство, получение финансирования, проведение исследования, написание рукописи – редактирование.
Конфликт интересов: авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
http://vetkuban.com/num6_202506.html