УДК: 619.614:636.5:621.
DOI 10.33861/2071-8020-2024-6-35-37
Махиева Б. М., Дагаева А. Б. Прикаспийский зональный научноисследовательский ветеринарный институт - филиал
Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный аграрный научный центр
Республики Дагестан», Республика Дагестан, г. Махачкала
В литературе отмечается, что выращивание птицы, с использованием современных промышленных техноло- гий, подвергает организм значительному потрясению.
Это может привести к невосполнимым потерям и далее летальному исходу.
Многие авторы считают, что для эффективной профилактики указанных нарушений важное значение приобретает диагностика нарушений обмена веществ с помощью биохимических и гематологических показателей крови. Дальнейшая оценка результатов исследований проводится в сравнении с физиологическими нормами в работе с птицей. Эти исследования ложатся в основу разработок и оценки влияния новых лекарственных препаратов, кормовых добавок и рецептур кормов на организм птицы [8, 9].
Кровеносная система отражает физиологическое состояние организма и является связующим звеном между всеми органами и системами органов, а также между всем организмом и внешней средой. Анализ крови (морфологический, биохимический и иммунологический) является одним из наиболее чувствительных и объективных средств определения состояния исследуемого организма [10, 11].
Напряженность тех или иных метаболических процессов сильно варьирует в зависимости от структурно-морфологических особенностей органов и тканей и их функционального назначения. Метаболизм в организме у птиц, как и других организмах, предопределен сложными биохимическими процессами с участием биологически активных и питательных веществ, поступающих и образующихся в организме [4].
Вне зависимости от поступления в кровь и выделения из крови различных метаболитов, в здоровом организме их химический состав приходит в физиологическую норму и поддерживается на постоянном уровне (гомеостаз), тогда как нарушения или сбои метаболических процессов приводят к нарушению обмена веществ и изменениям состава крови [3, 5, 6].
Многие авторы указывают на то, что нарушение аминокислотного состава может привести к летальному исходу. При составлении рационов необходим учет сбалансированности аминокислотного состава, при этом важно, чтобы они не антагонировали между собой, или с витаминами, имея в виду их «ответственность» за нервную и гормональную регуляцию всех процессов в организме [1, 2].
Несбалансированность аминокислотного состава и уровня обмена веществ в организме вызывает замедление роста и развития птиц, что наносит значительный экономический ущерб предприятиям, это необходимо учитывать при формировании рационов [12, 13, 14, 15, 16].
Материалы и методы исследований. Материалом для исследования служила птица, принадлежащая мелкотоварному фермерскому хозяйству ООО «Такалайская» Буйнакского района Республики Дагестан.
Производственные испытания проводили на 300 курочках-несушках породы Ломан Браун, которых разделили на 3 группы: одну контрольную и две опытных по 100 голов в каждой.
Первую подопытную группу курочек заражали перорально взвесью зрелых ооцист Eimeria tenella, в дозе 70 тыс., вторую -150 тыс. ооцист. Контрольная группа взвесь ооцист не получала.
Условия ухода, кормления и содержания подопытной птицы соответствовали зоотехническим нормам и требованиям, предусмотренным для конкретного вида птиц - породы Ломан Браун и были аналогичными.
В течение всего опыта вели наблюдения за общим состоянием цыплят. На 5-10-й дни после заражения пало от эймериоза, соответственно, 6 и 37 цыплят. Определение количественного содержания свободных аминокислот в цельной крови проводили до заражения и на 3, 6, 9, 12-14, 20-21-й дни после заражения. Результаты исследований подвергнуты статистической обработке по компьютерной программе «Биометрия».
Результаты исследований и их обсуждение. Материалы по содержанию свободных аминокислот в цельной крови контрольных и больных эймериозом цыплят даны в таблицах 1 и 2. Анализ их показывает, что в крови контрольных цыплят выявлено 13 свободных аминокислот. Сумма их составляла 21,91±0,6 и 23,12±0,99 мг%. Это совпадает с имеющимися литературными данными. Поэтому полученные показатели каждой в отдельности свободной аминокислоты и их суммы у здоровых цыплят приняты нами за норму.
У зараженных эймериями цыплят также выявлено в крови 13 свободных аминокислот. Однако, у них с развитием болезни наблюдалось постепенное увеличение общего количества свободных аминокислот. Пик подъема приходится на 6-е сутки после заражения - 25,63±1,99 мг% в первом и 26,51±1,71 мг% - втором опытах (р<0,001). Это совпало с периодом наибольшей тяжести болезни и временем четкого проявления типичных климатических признаков эймериоза. На 12-14-е сутки после заражения происходило некоторое снижение, на 20-21-е сутки восстановление их до нормы.
Анализ содержания отдельных свободных аминокислот в цельной крови подопытных цыплят в динамике болезни показывает, что в их концентрации происходят определенные изменения. Так, в первом опыте через 6 суток после заражения наблюдается увеличение цистина+цистеина, гистида, аспарагиновой и глютаминовой кислот, треонина, аланина, валина, лейцина+изо-лейцина, во втором, кроме того, серина и фенилаланина. Концентрация лизина, наоборот, достоверно снижалась в обоих опытах, аргинина в первом опыте недостоверно возрастало, во втором достоверно уменьшалось. Изменения остальных аминокислот -глицина, тирозина. триптофана, метионина - были незначительны и недостаточны.
С исчезновением видимых клинических признаков болезни концентрация отдельных свободных аминокислот постепенно приближалась к уровню у контрольных цыплят. Однако, к концу наблюдений (20 суток) во втором опыте концентрация треонина, валина, фенилаланина и аспарагиновой кислоты была достоверно повышенной, тогда как в первом концентрация всех аминокислот пришла в норму.
Таблица 1 Состав свободных аминокислот в цельной крови контрольных и опытных цыплят, зараженных Eimeria tenella в дозе 70 тыс. ооцист (в мг%)
| № | Наименование аминокислот | Контроль | Опытные (сутки после заражения) | ||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| 3-й | 6-е | 9-е | 12-е | 21-е | |||
| 1. | Цистин+цистеин | 4,15±0,05 | 4,03±0,11 | 4,78±0,21 | 4,31±0,12 | 4,22±0,19 | 4,24±0,15 |
| 2. | Лизин | 1,42±0,06 | 1,15±0,12 | 1,16±0,19 | 1,35±0,11 | 1,61±0,16 | 1,23±0,11 |
| 3. | Гистидин | 1,03±0,02 | 1,19±0,11 | 1,31±0,15 | 1,21±0,05 | 1,32±0,14 | 1,19±0,06 |
| 4. | Аргинин | 3,64±0,08 | 3,74±0,08 | 4,18±0,17 | 4,13±0,21 | 4,49±0,31 | 3,72±0,22 |
| 5. | Серин | 2,03±0,04 | 2,01±0,07 | 2,31±0,19 | 2,19±0,08 | 2,15±0,08 | 2,23±0,08 |
| 6. | Глицин | 1,49±0,05 | 1,24±0,06 | 1,38±0,11 | 1,32±0,07 | 1,54±0,14 | 1,61±0,12 |
| 7. | Треонин | 1,20±0,03 | 1,92±0,10 | 1,68±0,26 | 1,31±0,06 | 1,27±0,14 | 1,26±0,10 |
| 8. | Аланин | 3,22±0,09 | 3,49±0,13 | 4,19±0,21 | 3,65±0,22 | 3,45±0,26 | 3,25±0,09 |
| 9. | Тирозин | 0,38±0,02 | 0,38±0,01 | 0,52±0,07 | 0,43±0,08 | 0,49±0,09 | 0,34±0,08 |
| 10. | Триптофан | 0,35±0,03 | 0,41±0,09 | 0,43±0,09 | 0,34±0,09 | 0,36±0,13 | 0,32±0,11 |
| 11. | Метионин | 0,61±0,04 | 0,52±0,11 | 0,64±0,13 | 0,62±0,05 | 0,68±0,06 | 0,63±0,04 |
| 12. | Валин | 1,69±0,05 | 1,83±0,05 | 2,19±0,15 | 2,03±0,16 | 2,19±0,15 | 1,91±0,09 |
| 13. | Фенилаланин | 0,70±0,04 | 0,68±0,01 | 0,86±0,06 | 0,84±0,07 | 0,75±0,08 | 0,68±0,07 |
Таблица 2 Состав свободных аминокислот в цельной крови контрольных цыплят, зараженных Eimeria tenella в дозе 150 тыс. ооцист (в мг%)
| № | Наименование аминокислот | Контрольные цыплята | Опытные (сутки после заражения) | ||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| 3-й | 6-е | 9-е | 14-е | 20-е | |||
| 1. | Цистин+цистеин | 4,32±0,08 | 5,13±0,28 | 5,78±0,26 | 5,61±0,32 | 5,05±0,14 | 5,22±0,21 |
| 2. | Лизин | 1,22±0,06 | 1,14±0,08 | 0,86±0,13 | 0,82±0,11 | 0,80±0,05 | 1,34±0,15 |
| 3. | Гистидин | 0,89±0,05 | 1,09±0,16 | 1,15±0,09 | 1,32±0,15 | 1,09±0,08 | 0,92±0,13 |
| 4. | Аргинин | 4,46±0,14 | 4,03±0,17 | 3,54±0,16 | 3,23±0,13 | 3,26±0,17 | 3,95±0,22 |
| 5. | Серин | 2,62±0,11 | 2,04±0,08 | 2,57±0,14 | 2,71±0,22 | 2,45±0,08 | 2,36±0,07 |
| 6. | Глицин | 1,23±0,06 | 1,15±0,07 | 1,04±0,16 | 1,05±0,08 | 0,97±0,06 | 1,16±0,04 |
| 7. | Треонин | 1,51±0,04 | 1,59±0,12 | 2,19±0,17 | 2,18±0,17 | 2,16±0,12 | 1,87±0,09 |
| 8. | Аланин | 2,74±0,12 | 2,87±0,14 | 4,24±0,15 | 4,16±0,32 | 4,13±0,04 | 3,26±0,12 |
| 9. | Тирозин | 0,62±0,05 | 0,62±0,05 | 0,63±0,08 | 0,62±0,14 | 0,61±0,06 | 0,55±0,09 |
| 10. | Триптофан | 0,42±0,09 | 0,45±0,06 | 0,45±0,09 | 0,25±0,05 | 0,35±0,06 | 0,42±0,07 |
| 11. | Метионин | 0,69±0,08 | 0,72±0,05 | 0,76±0,08 | 0,73±0,06 | 0,68±0,05 | 0,58±0,06 |
| 12. | Валин | 1,49±0,06 | 1,51±0,03 | 2,14±0,08 | 2,29±0,24 | 2,14±0,08 | 1,74±0,04 |
| 13. | Фенилаланин | 0,91±0,05 | 0,86±0,09 | 1,16±0,12 | 0,95±0,03 | 1,02±0,11 | 1,12±0,05 |
Заключение. Проведенные исследования свидетельствуют о глубоких нарушениях обмена белка в организме при эймериозе цыплят. Это связано с тем, что кровь является внутренней средой организма и «белковым зеркалом» для оценки физиологических изменений в метаболизме. Содержание свободных аминокислот в крови цыплят изменяется сильнее по мере увеличения количества инфекции.
Список литературы:
1. Архипов, A. B. Рациональное использование протеина / А. В. Архипов // Птицеводство. 1996. № 3. С. 36-37.
2. Архипов, A. B. Протеиновое питание сельскохозяйственной птицы и пути его совершенствования / А. В. Архипов, Н. Г. Григорьев, В. Ф. Беккер // Совершенствование кормления сельскохозяйственной птицы. Колос. 1982. С. 13.
3. Алексеев, Ф. Ф. Промышленное птицеводство / Алексеев Ф. Ф., Асриян М. А., Бельченко Н. Б. // Агропромиздат. 1991. 544 с.
4. Влияние обменной энергии и аминокислот в комбикормах на продуктивность бройлеров / Е. А. Басова, А. Б. Мальцев, О. А. Ядрищенская, Г. Х. Баранова // Птица и птицепродукты. 2018. № 2. С. 28-30.
5. Голуб, И. Е. Нарушения кислотно-основного состояния и водно-электро-36 литного обмена / И. Е. Голуб, Е. С. Нетёсин, Л. В. Сорокина // ИГМУ. 2015. 43 с.
6. Горячев, Б. И. Патология обмена веществ у кур кросса «Родонит» в условиях промышленного птицеводства / Б. И. Горячев, Е. Б. Журина // 1999. 60 с.
7. Кавтарашвили, А. Ш. Стресс в промышленном птицеводстве и методы его предупреждения / А. Ш. Кавтарашвили, Т. Н. Колокольникова //
РацВетИнформ. № 4. 2010. С. 13-19.
8. Методические рекомендации по гематологическим и биохимическим исследованиям у кур современных кроссов / И. В. Насонов, Н. В. Буйко, Р. П. Лизун [и др.] // 2014.
9. Особенности изменения белкового обмена у перепелов при использовании лизина, метионина и треонина / Н. П. Нищеменко, Н. Н. Са-морай, О. А. Порошинская [и др.] // 2014. С. 251-257.
10. Рядчиков, В. Г. Способ подготовки пробы плазмы крови птиц для определения состава свободных аминокислот / В. Г. Рядчиков, А. П. Ра-дуль, О. Г. Шляхова // Патент на изобретение RU 2466397 C1.
11. Продуктивность и биохимические показатели крови цыплят-бройлеров кросса Росс 308 / С. В. Разаев, Г. Н. Вяйзенен, Н. В. Попова [и др.] // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. 2020. № 12 (185). С. 43-55.
12. Awad Elmutaz Atta et al. Effect of low-protein diet, gender and age on the apparent ileal amino acid digestibility in broiler chickens raised under hot-humid tropical condition // The Indian Journal of Animal Sciences. 2016. 86 (6). P. 696-701
13. Barekatain R. et al. Reduced protein diet and amino acid concentration alter intestinal barrier function and performance of broiler chickens with or without synthetic glucocorticoid // Poult Sci. 2019; 98: 3662-3675.
14. Gilani S. et al. New biomarkers for intestinal permeability induced by lipopolysaccharide in chickens // Animal Production Science. 2016. No. 56. P. 1984-1997.
15. Liu S. Y. et al. Starch and protein digestive dynamics in low-protein diets supplemented with crystalline amino acids // Animal Production Science. 2017. No. 57 (11). P. 2250-2256.
16. Kriseldi R. et al. Effects of feeding reduced crude protein diets on growth performance, nitrogen excretion, and plasma uric acid concentration of broiler chicks during the starter period // Poult Sci. 2018. No. 97. P. 1614-1626.
Резюме. В статье приведены данные по содержанию свободных аминокислот в цельной крови контрольных и больных эймериозом цыплят. Анализ содержания отдельных свободных аминокислот в цельной крови подопытных цыплят в динамике болезни показал, что в их концентрации произошли определенные изменения. Эймериозы широко распространены в Дагестане и среди заболеваний птиц паразитарной этиологии, зарегистрированных в регионе, занимают лидирующие позиции. Эпизоотии эймериозов кур причиняют большой экономический ущерб птицеводческим хозяйствам, за счет массового падежа цыплят. Тем не менее многие вопросы эймериозной проблемы изучены недостаточно. Эймерии и в настоящее время являются серьезным паразитарным врагом для птицеводства, использующим малейшие недостатки и нарушения ветеринарно-санитарных правил содержания, кормления, ухода и разведения птиц. Эпизоотическая безопасность птицеводческих хозяйств, в основном, зависит от состояния здоровья птицы. У зараженных эймериями цыплят выявлено в крови 13 свободных аминокислот. Однако, с развитием болезни наблюдалось постепенное увеличение общего количества свободных аминокислот. Выявили конструктивные глубокие нарушения аминокислотного состава в крови цыплят, наступающие на 6-е сутки после заражения их 100 тыс. ооцист Eimeria tenella - 25,63±1,99 мг% и 26,51±1,71 мг% после заражения 150 тыс. ооцист Eimeria tenella. Они выражались в резком увеличении общего количества и дискоординации отдельных аминокислот и это совпало с периодом наибольшей тяжести болезни и временем проявления типичных клинических признаков эйме-риоза. Учитывая важную роль аминокислот в жизнедеятельности организма, изучение их уровня в динамике развития болезни имеет определенное значение для более глубокого понимания патогенеза и клинической картины эймериоза. Эти данные могут иметь дополнительное диагностическое и прогностическое значение.
Ключевые слова: цыплята, эймериоз, ооциста, кровь, аминокислоты, заражение, возраст, обмен веществ, порода.
Сведения об авторах:
Дагаева Асият Багаутдиновна, научный сотрудник лаборатории по изучению инвазионных болезней сельскохозяйственных животных и птиц Прикаспийского зонального научно-исследовательского ветеринарного института - филиала ФГБНУ «Федеральный Аграрный Научный Центр Республики Дагестан»; 367000, Республика Дагестан, г. Махачкала, ул. Дахадаева, 88.
Ответственный за переписку с редакцией: Махиева Баху Магомедовна, кандидат ветеринарных наук, ведущий научный сотрудник лаборатории по изучению инвазионных болезней сельскохозяйственных животных и птиц Прикаспийского зонального научно-исследовательского ветеринарного института - филиала ФГБНУ «ФАНЦ рД»; 367000, Республика Дагестан, г. Махачкала, ул. Дахадаева, 88; e-mail: bahumahieva66@gmail.com.
http://vetkuban.com/num6_202410.html