УДК 619:616.34:615.33:636.4
DOI 10.33861/2071-8020-2024-5-8-11
Облогина Е. Ю., Марченко Т. В., Копыльцов С. В. ООО «БОНАКА», г. Краснодар
Терехов В. И. государственное бюджетное профессиональное образовательное учреждение
Краснодарского края «Пашковский сельскохозяйственный колледж», г. Краснодар
Несмотря на внедрение новых технологий содержания, кормления и ветеринарного сопровождения, проблема, связанная с потерей молодняка свиней на ранних этапах выращивания, является существенным барьером для роста рентабельности свиноводства. Среди болезней, чаще всего регистрируемых у поросят-сосунов как у нас в стране, так и за рубежом, фигурирует главным образом неонатальная диарея, которая поражает от 15 до 90% приплода в первые 10 дней после рождения. При этом летальность новорожденных поросят по причине болезней, сопровождающихся диарейным синдромом, может доходить до 40-60% [1, 3, 6, 8, 12, 13]. Однако экономический ущерб при неонатальных диареях связан не только с гибелью поросят и снижением продуктивности у переболевших животных, но и существенными затратами, пошедшими на лечение больных животных [7, 9, 12].
Причиной диареи у новорожденных поросят в различных ситуациях могут выступать различные факторы, но чаще всего это патогенные микроорганизмы [1]. Поэтому в литературе фигурируют такие нозологические формы как неонатальная диарея, неонатальный колибациллёз, поросячий понос, энтеротоксемия новорожденных поросят, инфекционный гастроэнтерит поросят-сосунов, неонатальный геморрагический и некротический энтерит, некротизирующий энтерит, неонатальный некротический энтеротифлоколит, эпидемическая диарея II типа, трансмиссивный гастроэнтерит и новая неонатальная диарея свиней [8, 11, 12, 13]. Однако какой бы микроорганизм не фигурировал в качестве возбудителя неонатальной диареи поросят, развитие инфекционного процесса во всех случаях возникает и протекает на фоне негативных изменений в микробиоме кишечного тракта животных [5, 8, 11]. Учитывая огромную роль симбионтной микрофлоры кишечника для своего хозяина, следует полагать, что первопричиной или предпосылкой для развития неонатальной диареи является, прежде всего, дисбаланс в формировании нормальной кишечной микробиоты [5, 10, 14].
Для новорожденных поросят основным источником разнообразной микрофлоры является свиноматка и именно от неё зависит состав формирующейся кишечной микробиоты. Например, было показано, что на фермах неблагополучных по неонатальной диарее поросят у всех обследованных до родов свиноматок выявляли в фекалиях, наружных половых органах и коже вымени присутствие гемолитической Escherichia coli, которая в дальнейшем выявлялась в различных отделах кишечника у однодневных поросят [2, 4, 5, 14].
Учитывая данные обстоятельства, в систему содержания поросят необходимо внедрять такие технологические приемы, которые позволяли бы ликвидировать бактерионосительство у матерей и через них опосредованно влиять на формирование микробиоценоза у новорожденных поросят, а, следовательно, на состояние их здоровья и продуктивные качества. В настоящее время, как у нас в стране, так и за рубежом, большинство таких технологий базируется на использовании антибактериальных препаратов и вакцин [1, 6, 13]. Однако, несмотря на свою эффективность, антимикробные препараты действуют не только на патогенные микроорганизмы, но и на полезную микрофлору, приводя, в конечном счёте, к развитию дисбактериоза. Кроме того, антибиотики и химиопрепараты способствуют развитию и распространению антибиотикорезистентности среди микробного окружения животных, а поэтому не безопасны как с экологической, так и санитарной и микробиологической точки зрения. Применение же вакцин не всегда результативно по той простой причине, что антигенный состав вакцин ограничен, и в полной мере не может отвечать антигенному составу возбудителей [7]. Немаловажным сдерживающим фактором является то обстоятельство, что в стаде от 10 до 30% свиноматок могут страдать синдромом ММА, а, следовательно, лишены способности передавать с молозивом иммуноглобулины поросятам и защищать их от инфекций [4].
В связи с вышеизложенным, на наш взгляд, наиболее привлекательным и рациональным приёмом профилактики неонатальных диарей может стать концепция направленного регулирования микробиоценоза, высказанная Л. С. Кавруком с соавт. [2]. Она заключается в том, что в репродукторных помещениях свиноводческих ферм наряду с контролем их санитарного состояния предлагается осуществлять контроль микробного окружения свиноматок и поросят за счёт использования микробиоценозкор-регирующих технологий. Данные технологии предусматривают применение препаратов, направленных на развитие и/или поддержание или восстановление микробиома животных с целью обеспечения их здоровья и продуктивности.
Одним из таких препаратов является кормовая добавка «Микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N», разработанная ООО «БОНАКА» (г. Краснодар). Уникальность данного пробиотического средства заключается в его составе, который включает консорциум живых штаммов пробиотических бактерий в количестве: Lactococcus lactis subsp. lactis - не менее 4x108 КОЕ/мл, молочнокислых бактерий (Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus, L. acidophilus, L. casei, L. plantarum) - не менее 5x108 КОЕ/мл, бифидобактерий (Bifidobacterium bifidum, B. longum, B. adolescentis) - не менее 2x107 КОЕ/мл и пропионовокислых бактерий (Propionibacterium shermanii, P. freudenrechii) - не менее 1x108 КОЕ/мл. Микробный состав пробиотика подобран таким образом, что он состоит из представителей симбионтных микроорганизмов являющихся резидентными как для молодняка, так и взрослых животных различных видов. Микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N» представляет собой жидкую суспензию светло-коричневого цвета, приятного кисломолочного запаха.
Цель работы состояла в изучении эффективности кормовой добавки «Микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N» для использования в профилактике неонатальной диареи у поросят.
Материалы и методы исследований. Для проведения исследования в свиноводческом хозяйстве было сформировано две группы - опытная и контрольная по 6 голов в каждой. Свиноматкам опытной группы с питьевой водой ежедневно в течение 10 дней до и 10 дней после родов давали микробиологический комплекс в дозе 10 мл на голову 1 раз в день. Животные контрольной группы получали питьевую воду без добавления микробиологического комплекса. За 1-2 дня до опороса и 8-9 дней после опороса у трёх свиноматок из опытной и контрольной групп из прямой кишки отбирали образцы фекалий и проводили микробиологические исследования. Поросятам, родившимся от свиноматок опытной группы, с первого дня в течение 10 дней подряд из шприца перорально вводили микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N» в дозе 2 мл. Поросята из контрольной группы были интактными. Ежедневно осуществляли клинический осмотр поросят и учёт всех случаев заболевания и падежа. На 21 день после рождения провели взвешивание всех поросят и у 6 поросят из каждой группы (по одному из каждого гнезда) отобрали образцы фекалий и крови для проведения микробиологических и иммуногематологических исследований. Микробиологические исследования по установлению состояния кишечного микробиоценоза проводили в лаборатории ООО «БОНАКА» с использованием различных дифференциально-диагностических и селективных питательных сред в соответствии с рекомендациями СПБГМА им. И.И. Мечникова «Совершенствование методов диагностики дисбактериоза толстого кишечника» (2002). Иммунно-гематологические исследования осуществлялись в лаборатории терапии ФГБНУ «Краснодарский научный центр по зоотехнии и ветеринарии» с использованием гематологического анализатора «Mythic-18» и методов, изложенных в методических рекомендациях «Иммунологические методы исследования в ветеринарии» (2001).
Результаты исследований и их обсуждение. Исследования показали (табл. 1), что у свиноматок из контрольной группы в толстом отделе кишечника до опороса было высокое содержание потенциальных возбудителей гнойно-воспалительных процессов - эшерихий (8,15±0,35 lg KOE/г), стрептококков (9,45±0,47 lg KOE/г) и стафилококков (4,55±0,96 lg KOE/г). Причём среди эшерихий и стрептококков в большом количестве присутствовали гемолитические формы. В то же время количество представителей симбионтной микрофлоры было меньшим, что является показателем дисбиотических процессов.
У свиноматок из опытной группы под влиянием пробиотической кормой добавки «Бонака-АПК-N» уже через 8-9 дней после её назначения микробный пейзаж кишечного тракта заметно отличался от животных из контрольной группы. Это проявилось достоверным снижением общего количества эшерихий (до 5,89±0,35 lg КОЕ/г) и полным исчезновением их гемолитических форм, уменьшением количества стафилококков (до 2,33±0,25 lg КОЕ/г), клостридий (до 1,15±0,35 lg КОЕ/г), гемолитических форм стрептококков (до 2,13±0,31 lg КОЕ/г) и напротив, увеличением на 1-2 порядка численности лактобацилл (8,51±0,23 lg КОЕ/г) и бифидобактерий (9,55±0,23 lg КОЕ/г).
Таблица 1 Влияние кормовой добавки «Бонака-АПК-N» на состав фекальной микрофлоры свиноматок (lg KOE/г)
Микроорганизм | До опороса | После опороса | ||
---|---|---|---|---|
контроль | опыт | контроль | опыт | |
Escherichia coli | 8,15±0,35 | 5,89±0,35* | 8,50±0,73 | 5,95±0,19* |
в т.ч. гемолитическая | 2,13±0,37 | 0 | 3,89±0,47 | 0 |
Streptococcus spp. | 9,45±0,47 | 8,33 ±0,85 | 8,55±0,67 | 7,15±0,71 |
в т.ч. гемолитические | 6,39±0,63 | 2,13±0,31* | 6,29±0,88 | 1,19±0,15* |
Clostridium spp. | 5,71±0,13 | 1,15±0,35* | 4,21±0,39 | 1,19±0,15* |
Staphylococcus spp. | 4,55±0,96 | 2,33±0,25 | 5,47±0,48 | 1,05±0,09* |
Lactobacillus spp. | 6,43±0,79 | 8,51±0,23 | 5,55±0,45 | 8,75±0,23 |
Bifidobacterium spp. | 8,11±0,79 | 9,55±0,23 | 7,19±0,98 | 10,11±0,21* |
* - достоверное различие показателей опытной группы от контрольной (Р<0,05)
После опороса у свиноматок из контрольной группы реперный состав микроорганизмов, характеризующих состояние кишечного микробиоценоза, ещё в большей степени отличался диспропорцией. Количество условно патогенных бактерий практически не изменилось (а стафилококков даже увеличилось), а вот количество симбионтных лактобацилл и бифидобактерий, напротив, уменьшилось. В то же время у свиноматок из опытной группы в содержимом толстого отдела кишечника количество эшерихий, стрепто- стафилококков ещё уменьшилось, а количество молочнокислых бактерий не изменилось и оставалось на уровне 8-10 lg KOE/г, что свидетельствует о нормобиозе.
Следует отметить, что микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N» способствовал не только восстановлению микро-биоценоза, но также повышал поедаемость и усвоение кормов свиноматками, что повлияло на их молочную продуктивность. Взвешивание поросят при рождении и в 21-дневном возрасте позволило установить молочность свиноматок контрольной и опытной группы (табл. 2). Как оказалось средняя масса поросёнка в опытной группе составила 5,9±0,25 кг, а в контрольной - 5,0+0,27 кг, следовательно свиноматки из опытной группы были на 900 г продуктивнее, чем свиноматки из контрольной группы.
Таблица 2 Эффективность применения кормовой пробиотической добавки «Микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N» с целью профилактики диарей у поросят-сосунов
Показатель | Опытная группа (n=67) | Контрольная группа (n=69) |
---|---|---|
Заболело, гол (%) | 7 (10,4) | 21 (30,4) |
Пало, гол. (%) | 2 (2,9) | 13 (18,8) |
Сохранность, % | 97,1 | 81,2 |
Средняя масса поросенка при рождении, кг | 1,45±0,21 | 1,43±0,28 |
Средняя масса поросенка в 21-дневном возрасте, кг | 5,9±0,25* | 5,0±0,27 |
Среднесуточный прирост, г | 212±15* | 170±20 |
Средняя масса поросенка в 21-дневном возрасте, кг | 5,9±0,25* | 5,0±0,27 |
Среднесуточный прирост, г | 212±15* | 170±20 |
* - достоверное различие показателей опытной группы от контрольной (Р<0,05)
Поросята из опытных гнезд имели лучшие тенденции роста, у них практически отсутствовали поносы, в то время как у более 30% поросят из контрольных гнезд наблюдали поносы. Сохранность поросят в опытной группе составила 97,1%, а в контрольной - 81,2%.
О закономерности низкой заболеваемости поросят в опытных гнездах и высокой в контрольных гнездах свидетельствовали результаты бактериологических исследований фекалий и состояния их иммунного статуса в 21-дневном возрасте. Результаты этих исследований отражены в таблице 3 и 4. Из материалов таблицы 3 видно, что в микробиоценозе толстого отдела кишечника поросят контрольной группы в 21-дневном возрасте преобладают эшерихии и стрептококки, среди которых циркулируют и гемолитические формы. Кроме того, у них в достаточно высоких концентрациях присутствуют клостридии и стафилококки. Напротив, в фекалиях подопытных поросят общее количество эшерихий было на 2 порядка меньшим и среди них полностью отсутствовали гемолитические формы, в то же время количество лактобацилл и бифидобактерий было большим. Количество бифидобактерий было даже на два порядка большим. Такое соотношение представителей условно патогенных и симбионтных бактерий в дистальном отделе кишечного тракта у поросят опытной группы является показателем здорового микробиома.
Таблица 3 Влияние кормовой добавки «Микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N» на состав фекальной микрофлоры у 21-дневных поросят (lg KOE/г)
Микроорганизм | Опытная группа | Контрольная группа |
---|---|---|
Escherichia coli | 7,46±0,21* | 9,71±0,18 |
в т.ч. гемолитическая | 0 | 1,86±0,54 |
Streptococcus spp. | 10,48±0,21 | 10,50±1,17 |
в т.ч. гемолитические | 0 | 1,16±0,21 |
Clostridium spp. | 3,3±0,48* | 6,9±0,32 |
Staphylococcus spp. | 2,44±0,52 | 3,45±0,62 |
Lactobacillus spp. | 9,06±0,50 | 8,76±0,22 |
Bifidobacterium spp. | 9,02±0,65* | 7,1±0,42 |
* - достоверное различие показателей опытной группы от контрольной (Р<0,05)
Таким образом, несмотря на непродолжительный период назначения новорожденным поросятам пробиотической кормовой добавки, тем не менее, у них были налицо явные признаки физиологически полноценного формирования кишечного микро-биоцеоза, который по данным литературы у них происходит к 3-4 неделе после рождения [10, 11, 15].
Кроме того, исследования крови показали (табл.4), что дача поросятам микробиологического комплекса «Бонака-АПК-N» позитивно повлияла на содержание гемоглобина, которое было достоверно более высоким, чем у сверстников из контрольных гнезд. Обращало на себя внимание повышение фагоцитарной активности нейтрофилов и их переваривающей способности у поросят из опытной группы. Так эти показатели у животных опытной группы составили соответственно 64,7±0,44 и 67,3±0,53%, в то время как у поросят из контрольной группы они были на уровне 53,0±0,36 и 59,3±0,42%. Как известно, при бактериальных инфекциях фагоцитоз играет определяющую роль, поэтому усиление этого звена иммунитета следует рассматривать как позитивный момент в противоинфекционной защите.
Таблица 4 Влияние кормовой добавки «Микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N» на иммуногематологические показатели 21-дневных поросят
Показатель | Опытная группа | Контрольная группа |
---|---|---|
Эритроциты, 109/л | 5,07+0,39 | 4,49±0,51 |
Гемоглобин, г/л | 138,8±0,91* | 105,3±0,88 |
Лейкоциты, 106/л | 10,3±1,23 | 8,98±0,67 |
Лейкоформула, %: Эозинофилы | 0,6±0,4 | 0,4±0,4 |
Нейтрофилы: Юные | 0,4±0,4 | 0,4±0,4 |
Палочкоядерные | 10,4±0,98 | 12,0±1,46 |
Сегментоядерные | 41,6±3,62 | 40,6±1,74 |
Моноциты | 5,2±0,91 | 6,3±1,24 |
Лимфоциты | 41,8±3,74 | 40,3±2,32 |
Т-лимфоциты (Е-РОК), % | 38,9±2,56 | 32,0±2,98 |
В-лимфоциты (ЕАС-РОК), % | 25,6±1,65 | 21,7±1,77 |
Фагоцитарная активность нейтрофилов, % | 64,7±0,44* | 53,0±0,36 |
Переваривающая способность нейтрофилов, % | 67,3±0,53* | 59,3±0,42 |
Ig M, мг/мл | 1,44±0,24 | 0,84±0,10 |
Ig G, мг/мл | 5,16±0,14* | 3,27±0,21 |
Фагоцитарная активность нейтрофилов, % | 64,7±0,44* | 53,0±0,36 |
Переваривающая способность нейтрофилов, % | 67,3±0,53* | 59,3±0,42 |
* - достоверное различие показателей опытной группы от контрольной (Р<0,05)
Помимо этого в сыворотке крови подопытных поросят установлено более высокое содержание иммуноглобулинов, особенно IgG. Данное обстоятельство, вероятно, может быть объяснено не столько активизацией собственных В-лимфоцитов, являющихся продуцентами Ig, сколько поступлением молозивных антител. О правомочности данного предположения свидетельствуют показатели заболеваемости и смертности, отраженные в таблице 2. Данные таблицы 2 свидетельствуют, что при одинаковых условиях содержания в опытных гнездах, где вначале свиноматки, а затем поросята получали микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N», заболеваемость неонатальными диареями была на 20%, а смертность на 16% меньшими, чем в контрольных гнездах.
Заключение. Таким образом, использование пробиотической кормовой добавки «Микробиологический комплекс «Бона-ка-АПК-N» свиноматкам за 10 дней перед родами и 10 дней после них, а также десятидневная его дача новорожденным поросятам позволяет не только сдерживать размножение патогенных микроорганизмов, но и практически полностью их элиминировать из кишечного тракта, как у взрослых животных, так и молодняка. Регулирование становления кишечного микробиома позволило в значительной степени снизить частоту развития у поросят неонатальной диареи. Полученные нами данные позволяют по-новому взглянуть на стратегию профилактики острых кишечных инфекций у новорожденных поросят. Основным направлением этой стратегии должно стать превентивное регулирование микроэко-логических процессов в кишечном тракте у рожениц и направленное формирование микробиоценоза пищеварительного тракта у новорожденных. Учитывая колоссальную роль симбионтной микрофлоры не только в процессах пищеварения, но и системе антиинфекционной, антитоксической защиты макроорганизма [1, 2, 5, 14, 15] данное положение не является голословным. Только собственная, резидентная микрофлора может обеспечить долгосрочный характер протекания физиологических процессов. Поэтому, способствуя её сохранению и нормальному функционированию, можно гарантированно контролировать здоровье и продуктивность стада.
Список литературы:
1. Ветвицкая, А. Диарея у поросят: эффективные шаги по защите поголовья / А. Ветвицкая // Эффективное животноводство. 2020. № 8 (165). С. 39-45.
2. Каврук, Л. С. Направленное регулирование микробиоценоза в репродукторных помещениях свиноводческих ферм и неспецифическая профилактика бактериальных кишечных инфекций поросят/ Л. С. Каврук, А. Б. Кононенко, С. В. Бритова // Экологические проблемы патологии, фармакологии и терапии животных : Матер. межд. координац. совещания. 1997. С. 315-316.
3. Махмутов, А. Ф. Мониторинг инфекционных желудочно-кишечных заболеваний новорожденных поросят в регионах среднего Поволжья и Предуралья / А. Ф. Махмутов, Г. Н. Спиридонов, Р. Н. Аглямов // Ветеринарный врач. 2011. № 5. С. 25-28.
4. Мисайлов, В. Д. Агалактия у свиноматок - одна из причин высокой заболеваемости и гибели поросят / В. Д. Мисайлов // Актуальные проблемы болезней молодняка в современных условиях : Матер. межд. научно-практ. конф. 2002. С.21-22.
5. Псиола, В. Н. Новые подходы к профилактике эшерихиоза поросят / А. В. Скориков, В. И. Терехов, В. Н. Псиола // Актуальные проблемы инфекционной патологии и иммунологии животных : Матер. межд. на-уч.-практич. конф. 2006. С. 365-369.
6. Селезнева, В. Н. Профилактика неонатальной диареи поросят / В. Н. Селезнева, Ч. Р. Галиева // Зыкинские чтения : Материалы Национальной научно-практической конференции. 2022. С. 192-197.
7. Скориков, А. В. Эпизоотическая ситуация по колибактериозу поросят в Краснодарском крае / А. В. Скориков, В. И. Терехов, А. Ф. Дмитриев // Ветеринария Кубани. 2015. № 4. С. 3-6.
8. Смоленцев, С. Ю. Желудочно-кишечные расстройствах у поросят / С. Ю. Смоленцев, А. С. Гасанов // 2023. С. 805-808.
9. Тейлор, Д. Кишечные заболевания - похитители прибылей / Д. Тейлор // Международное животноводство. 2000. № 5/2. С. 23-26.
10. Guevarra R. B. et al. Piglet gut microbial shifts early in life: causes and effects // J Anim Sci Biotechnol. 2019. No. 10. P. 1.
11. Hermann-Bank M. et al. Characterization of the bacterial gut microbiota of piglets suffering from new neonatal porcine diarrhea // BMC Vet Res. 2015. No. 11. P. 139.
12. Jacobson M. On the Infectious Causes of Neonatal Piglet Diarrhoea -A Review // Veterinary Sciences. 2022. No. 9 (8). P. 422.
13. Kongsted H. et al. Diarrhoea in neonatal piglets: a case control study on microbiological findings // Porcine Health Manag. 2018. No. 3 (4). P. 17.
14. Saladrigas-Garcia M. et al. An insight into the commercial piglet’s microbial gut colonization: from birth towards weaning // Anim Microbiome. 2022. No. 4 (1). P. 68.
15. Wang G. et al. Lactobacillus reuteri improves the development and maturation of fecal microbiota in piglets through mother-to-infant microbe and metabolite vertical transmission // Microbiome. 2022. No. 10 (1). P. 211.
Резюме. Неонатальная диарея наиболее распространённая патология у поросят. Она наносит значительный экономический ущерб, связанный с гибелью поросят-сосунов, снижением их продуктивности и затрат на проведение лечебных и ветеринарно-санитарных мероприятий. По данным отечественных и зарубежных авторов, ею могут пере-болевать от 15 до 90% приплода, при этом летальность может доходить до 40-60%. Цель работы состояла в изучении эффективности кормовой добавки «Микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N» в профилактике неонатальной диареи у поросят. Свиноматкам опытной группы (6 гол) с питьевой водой ежедневно в течение 10 дней до и 10 дней после родов давали микробиологический комплекс в дозе 10 мл на голову 1 раз в день. Животные контрольной группы (6 гол) получали питьевую воду без добавления микробиологического комплекса. Поросятам, родившимся от свиноматок опытной группы (67 гол), с первого дня в течение 10 дней подряд из шприца перорально вводили микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N» в дозе 2 мл. Поросята из контрольной группы (69 гол) были интактными. На 21 день после рождения провели взвешивание всех поросят и у 6 поросят из каждой группы (по одному из каждого гнезда) отобрали образцы фекалий и крови для проведения микробиологических и иммуногематологических исследований. Результаты опыта показали, что использование микробиологического комплекса «Бонака-АПК-N» свиноматкам и новорожденным поросятам позволяет целенаправленно корректировать кишечный микробиоценоз как у свиноматок, так и поросят. У свиноматок, получавших пробиотическую добавку, увеличилась молочная продуктивность, а у поросят на 24,7% увеличился среднесуточный прирост, а главное на 20% сократилось число случаев заболевания диареей и на 16% число смертельных исходов.
Ключевые слова: неонатальная диарея, поросята-сосуны, профилактика, микробиоценоз, пробиотики, кормовая добавка, микробиологический комплекс «Бонака-АПК-N».
Сведения об авторах:
Облогина Елена Юрьевна, генеральный директор ООО «БОНАКА»; 350015, г. Краснодар, ул. Кузнечная, 66; тел.: 8-861-2055299; e-mail: elena.levina@bonaka.ru.
Марченко Татьяна Витальевна, кандидат ветеринарных наук, директор по технологическому развитию ООО «БОНАКА»; 350015, г. Краснодар, ул. Кузнечная, 66; тел.: 8-861-2055299; e-mail: tatyana.marchenko@bonaka.ru.
Копыльцов Сергей Васильевич, кандидат биологических наук, главный биотехнолог ООО «БОНАКА»; 350015, г. Краснодар, ул. Кузнечная, 66, тел.: 8-861-2055299; e-mail: sergey.kopyltcov@bonaka.ru.
Ответственный за переписку с редакцией: Терехов Владимир Иванович, доктор биологических наук, профессор, преподаватель ГБПОУ КК «Пашковский сельскохозяйственный колледж»; научный консультант ООО «БОНАКА»; 350910, г. Краснодар, ул. им. Евдокии Бершанской, 220; тел.: 8-988-4742115; e-mail: vterekhov@list.ru.
http://vetkuban.com/num5_202403.html